Текст книги "Современные биотехнологии в сельском хозяйстве"
Автор книги: Коллектив Авторов
Жанр: Прочая образовательная литература, Наука и Образование
сообщить о неприемлемом содержимом
Текущая страница: 3 (всего у книги 10 страниц) [доступный отрывок для чтения: 3 страниц]
Как и в других отраслях животноводства, в птицеводстве применяют биорегуляторные пептиды, которые способствуют профилактике заболеваний, повышению адаптационных возможностей, улучшению иммунных процессов, ускорению структурно-функционального становления их тканей, органов и организма птицы в целом.
Термин «иммуномодулятор» (modulatio – перемена состояния изменение) употребляют тогда, когда говорят о веществах, нормализующих работу иммунной системы. Однако в отечественной литературе наравне с термином «иммуномодулятор» употребляется термин «иммуностимулятор» [55].
В настоящее время накоплен определенный опыт применения иммуномодуляторов в птицеводстве [14, 64, 66, 69, 70]. Экспериментальным путем установлено, что они оказывают прямое влияние на иммунокомпетентные органы у цыплят на 510 сутки после введения препарата [15].
Тималин, введенный бурсэктомированным циклофосфаном цыплятам, оказал незначительный лечебный эффект, а при гидрокортизоновой супрессии, когда в основном нарушался Т-клеточный иммунитет, практически восстанавливал нарушенное звено иммунитета [77].
В настоящее время сотрудниками ВНИВИП разработана схема применения тималина:
первый раз – в форме аэрозоля в инкубаторе, за 16 часов до окончания инкубации, при наклеве эмбрионов и выводе цыплят не менее 90 %; второй раз – аналогично, в форме аэрозоля в специальном помещении инкубатория или внутримышечно с вакциной против болезни Марека. Применение тималина позволяет повысить сохранность молодняка на от 1,5 % до 2,0 % и эффективность вакцинации против БМ в 1,5-2 раза. Установлено, что тималин, наряду с повышением иммунного статуса у птиц, стимулирует рост и повышает сохранность цыплят. Так, при его применении в условиях птицехозяйства отход цыплят за 1-60 и 61-90 сутки выращивания был ниже на 2,9 и 1,9 % соответственно, а среднесуточный прирост живой массы, за весь период, выше на 0,8 % [52, 54].
Н.В. Садовниковым были проведены исследования по изучению влияния тимогена на показатели живой массы цыплят – гипотрофиков. В суточном возрасте им был аэрозольно введен тимоген в дозе 400 мкг/м3. Цыплятам контрольной группы был введен изотонический раствор хлорида натрия. Контроль за живой массой подопытных цыплят показал, что в 30-суточном возрасте средняя живая масса цыплят в опытной группе была на 18 % (Р < 0.05) выше, по сравнению с контролем, а в 60суточном возрасте разница составила 38,5 % (Р < 0,05). В возрасте 110 дней средняя живая масса цыплят-гипотрофиков в опыте была выше средней живой массы сверстников на 28,3 % (Р < 0,01). Сохранность поголовья в опытной группе цыплят увеличилась на 22 % [68].
З.Ф. Джановой, проводившей исследования по сочетанному применению пробиотика бифидумбактерина и иммуномодулятора тималина для профилактики колибактериоза цыплят, установлено, что применение тималина в 1– и 7-суточном возрасте в дозе 40 мкг/кг внутримышечно, способствует увеличению количества бифидобактерий в слизистой оболочке тонкого отдела кишечника на 16-е и 21-е сутки на 1,6 и 1,2, а при сочетанном применении БСВ и тималина в эти же сроки отмечен аддитивный эффект увеличения количества бифидобактерий, соответственно на 4,8 и 4,6 % [7].
Применение тималина в производственных условиях во время вывода в виде аэрозоля (1,5 мл/м) и повторно цыплятам суточного возраста внутримышечно (40 мкг/кг), увеличивает их сохранность до 60-суточного возраста на 3,7 %, а при курсовом назначениицБСВ на 1, 3, 5, 7 и 9-е сутки – на 2,4 %, по сравнению с аналогичными показателями в контрольной группе. Применение обоих препаратов в сочетании является более эффективным и увеличивает сохранность цыплят на 5,1 %. При этом падеж цыплят от колибактериоза снижается на 8,1 % [8].
Учеными ВНИВИП разработаны методические указания, которые рекомендуют: БСВ и тималин вводить в эмбрионы 17– 18-суточного возраста, когда их переносят из инкубаторного шкафа в выводной. Перед применением препаратов эмбрионы овоскопируют, определяют центр воздушной камеры, это место дезинфицируют, прокалывают скорлупу и в отверстие инъецируют БСВ посредством иглы 22 калибра, длиной 2,54 см, затем отверстие заклеивают расплавленным парафином с фурацилином. Тималин вводят в хорио-аллантоисную оболочку эмбриона. БСВ инъецируют в дозе 0,375 млн. ед., а тималин – в дозе 40 мкг/кг. При сочетанном введении этих препаратов кишечный тракт выведенных цыплят колонизируется бифидобактериями, причем их количество достигает такого уровня, что и при 5-кратном пероральном применении профилактической дозы БСВ (0,5 млн. ед.). Кроме того, сочетанное введение БСВ и тималина стимулирует иммунную систему выведенных цыплят [60].
Н.В. Садовников, изучая влияние тимогена на биохимические показатели крови цыплят-гипотрофиков при введении препарата аэрозольно в дозах 200 мкг/м3 и 400 мкг/м3 и внутримышечно в дозе 10 мкг/кг живой массы пришел к выводу, что содержание общего белка в сыворотке крови при дозе тимогена 200 мкг/м3 нормализовалось, так как на 25-е сутки после введения тимогена, концентрация его уменьшилась до (37,6 ± 0,1) г/л и была на уровне клинически здоровых цыплят. Содержание аминного азота в сыворотке крови опытных цыплят было ниже на 54,6 % (Р < 0,05), по сравнению с концентрацией аминного азота у здоровых цыплят [71, 72].
Исследования по изучению действия тимогена на состав фракций белков сыворотки крови при различных дозах введения цыплятам-гипотрофикам показали, что через 25 суток после его введения в дозе 200 мкг/м3 аэрозольным способом, был повышен относительный процент альбуминов (53,6 ±4,3) %, по сравнению с цыплятами нормальной физиологической зрелости (32,1 ±2,7) %, кроме того, отмечено увеличение γ-глобушгаов на (16,4 ± 0,8) %, Р < 0,05 [63].
Сотрудники Санкт-Петербургской государственной академии ветеринарной медицины исследовали показатели крови и костного мозга у цыплят-гипотрофиков после применения тимогена. Ими установлено, что после введения препарата аэрозольным методом, в дозе 200 мкг/м3 в возрасте 5 суток, спустя 10 дней, отмечалось увеличение количества эритроцитов, которое имело достоверное различие начиная с 30– и 60-суточного возраста цыплят (1,85 ±0,4)*1012/л и 2,60 ±0,10)*1012/л, Р < 0,05, по сравнению с величинами предыдущего возрастного периода цыплят. К 60-дневному возрасту цыплят наблюдалось понижение величины цветового показателя крови. У 16-суточных цыплят количество лейкоцитов в крови увеличилось до (18,0 ±0,9)*109 /л, Р < 0,05, по сравнению с количеством лейкоцитов крови у цыплят-гипотрофиков контрольной группы (12,8±0,10)*109 /л. По данным А.Д. Шушарина, Н.В. Садовникова у цыплят, которым тимоген вводили аэрозольно в дозе 200 мкг/м3, количество миелокариоцитов в красном костном мозге в 30суточном возрасте существенно не отличалось от таковой величины цыплятгипотрофиков контрольной группы, однако к 60-суточному возрасту цыплят, количество миелокариоцитов увеличивалось до (417,3 ±7,5)*109 /л, Р < 0,05 и превышает количество миелокариоцитов в красном костном мозге цыплят-гипотрофиков контрольной группы (343,2 ±15,0)*109/л [65, 85, 86].
Таким образом, проведенные на сегодняшний день исследования по применению иммуностимуляторов в птицеводстве свидетельствуют о перспективности их использования в ветеринарной и зоотехнической практике.
Анализ теоретических и экспериментальных аспектов биорегуляции свидетельствует о том, что РП играют важную роль в переносе информации, поддержании и нормализации динамического равновесия организма.
Разработка этого направления имеет важное теоретическое и практическое значение как в области медицины, так и ветеринарии при выращивании млекопитающих и птицы. Применение иммунотропных веществ может преследовать следующие практические цели:
1) восстановление подавленной функции иммунной системы при иммунодефицитных состояниях незаразной этиологии, или при аутоиммунных заболеваниях.
2) повышение степени защиты организма против развития инфекционного заболевания при попадании в него возбудителя.
3) потенционирование действия других фармакологических веществ, оказывающих действие на иммунную систему.
По данным Н.Д. Придыбайло, тималин целесообразно вводить птице двухкратно. Первый раз – аэрозольно в выводном инкубаторе за 16 час до окончания инкубации, при наклеве эмбрионов и выводе не менее 90 % цыплят. Препарат распыляют аэрозольно в количестве 4,5 мг/м3, экспозиция ингаляции в аэрозоле составляет 20 мин. Повторно – в виде аэрозолей в специальном помещении (камере) инкубатория после сортировки цыплят в той же дозе или внутримышечно с вакциной против БМ в дозе 40 мкг/кг живой массы цыпленка. Применение тималина позволяет повысить сохранность молодняка на от 1,5 % до 2 % и эффективность вакцинации против БМ в 1,5-2 раза [53, 54, 76].
Тимусные препараты можно вводить одновременно с пробиотиками и антибиотиками, что значительно потенциирует их действие. Они не накапливаются в организме, так как распадаются впоследствии на естественные метаболиты – аминокислоты.
Таким образом, подводя итог литературному обзору, следует заключить, что в условиях промышленного ведения птицеводства при интенсивной эксплуатации птицы стрессы и иммунодефицита являются не только предшественниками многих заболеваний, но и сами по себе вызывают патологические состояния различной тяжести и, как правило, снижают продуктивность и сохранность поголовья.
1.3 Перспективы применения биоконверсионных процессов в сельском хозяйстве
Мировой дефицит белка к началу XXI века оценивается до 40,0-50,0 млн. тонн. В этой связи на первый план встают вопросы, связанные с получением с помощью микроорганизмов кормов для сельскохозяйственного производства. Однако между темпами роста поголовья скота и производством кормов, а также количеством производимых питательных веществ и содержанием протеина в них, существуют серьезные диспропорции. При этом только 50 % вырабатываемых комбикормов сбалансировано по протеину. По этой причине ежегодный недобор продуктов животноводства составляет выше 40 %. Одной из важнейших задач биотехнологии в настоящее время является создание дополнительной сырьевой базы, связанной с получением с помощью микроорганизмов кормов для сельскохозяйственных животных. Особый интерес в этом плане представляют отходы растениеводства, перерабатывающих предприятий пищевой и плодоовощной промышленности. Решение проблемы утилизации отходов позволит осуществить переход на замкнутые, безотходные технологические схемы и формировать технологические комплексы по принципу экологической совместимости и экономической целесообразности использования отходов. Значительная доля такого сырья является высокопитательной средой для традиционных продуцентов и требует минимальных затрат в производстве. В этом направлении особый интерес представляет разработка производства кормов за счет использования микроорганизмов, синтезирующих целлюло– и лигнолитические ферменты для твердофазной ферментации субстратов, имеющих низкую питательную ценность с целью повышения ее. В результате фотосинтеза на нашей планете накапливается огромнейшее количество растительной биомассы. Ежегодный прирост ее составляет 184 х 10 тонн, в т.ч. целлюлозы 10x10 тонн. Основные характеристики этого вида сырья – масштабность, возобновляемость, высокое содержание энергии органических веществ, в связи с чем, вопрос гидролитической деградации целлюлозы приобретает важное значение. Разработка рациональных способов утилизации целлюлозосодержащих отходов позволит решить ряд проблем производства пищевых и кормовых продуктов. Помимо традиционного использования соломы в последнее время стали уделять внимание гидролизу такого сырья, как водоросли, мелкое волокно целлюлозы, виноградные стебли. Получаемая в больших количествах лузга и шелуха зерновых культур, как побочный продукт зернопереработки, также может использоваться, после предварительной обработки, для кормопроизводства. Однако при переработке данного сырья в гидролизно-дрожжевой промышленности образуются вторичные отходы (лигнин, сточные воды и т.д.), расходы на химические реагенты усугубляются транспортными затратами в связи с невысоким насыпным весом данного сырья, кроме того, гидролиз приводит к разрушению части (до 30 %) образующейся глюкозы. Следовательно, будущее в решении проблемы получения полезных продуктов из целлюлозосодержащего сырья принадлежит ферментативному гидролизу, разработке продуцентов целлюлаз, оптимизации процессов их выращивания (Е.Г. Владимирова с соавт., 1991; 1993; 1995; Г.В.Карпова с соавт., 1991-1997; М.Г. Саубенова с соавт., 1994).
Наиболее распространенными и активными продуцентами целлюлаз являются грибы, играющие ключевую роль в круговороте углерода в природе, лучшим продуцентом признан Trichoderma reesei, концентрация целлюлозного комплекса в культуральной жидкости около 20 г/л при продуктивности биомассы до 200 мг/л.ч. Однако, степень адсорбции его на субстрате недостаточна, поэтому проводится скрининг природных и коллекционных штаммов целлюлолитиков более эффективных по этому признаку. Кроме того, конверсию целлюлосодержащего субстрата грибы рода Trichoderma способны осуществлять строго в аэробных условиях, к тому же, как правило продуцируют токсины и загрязняют окружающую среду спорами. Наиболее перспективными в этом плане являются бактерии, которые обладают большей скоростью роста и более удобны для генетических преобразований. Между грибными целлюлазами и бактериальными существуют различия как в локализации их, так и в составе целлюлазного комплекса. Если большинство грибов выделяют целлюлазу в окружающую среду, то у бактерий фермент связан со структурами клеточной стенки и его действие проявляется при контакте организма с целлюлазными субстратами. Среди бактериальных организмов интерес представляет род Cellulomonas. Ведутся исследования по разработке технологии биоконверсии целлюлосодержащего сырья, отличающейся достаточно высокой эффективностью и экономичностью. Однако в решении данной задачи возникает множество вопросов. Во-первых, это зависит от специфики субстрата, т.к. целлюлоза, целлюлолигниновая матрица, отличается высокой стойкостью; а во-вторых необходим оптимальный выбор микроорганизмов, условий их культивации; не полностью использованы возможности смешанных культур. Подбор штамма-продуцента один из основных этапов работы в микробиологической промышленности. Он должен иметь способность к активному синтезу целевого продукта, отличаться рядом производственнополезных свойств, определяющих его технологичность, в частности – популяционную устойчивость и резистентность к повреждающим воздействиям. Так, в гидролизно-дрожжевой промышленности помимо термо и ацидотолерантности требуется устойчивость к фурфуролу и другим ингибиторам. Большое внимание уделяется селекции микроорганизмов, в т.ч. с применением методов генной инженерии. Весьма перспективной является возможность получения новых штаммов с помощью естественной гибридизации, условия для которой создаются в смешанных культурах. Предлагается использовать такой подход, как альтернативу генной инженерии, что говорит в пользу применения микробных ассоциаций. Многие авторы активно работают над поиском оптимальной структуры смешанной популяции. Показано, что при подборе близкородственных культур конкуренция за субстрат заканчивается доминированием организма, способного более полно утилизировать субстрат и обладающего более высокой скоростью роста. Для достижения устойчивого равновесия ассоциации благоприятным является использование смешанной культуры микроорганизмов, различающихся по способности к окислению субстрата. Это положение справедливо и для моносубстратов, когда в монокультуре накапливаются промежуточные продукты, тормозящие рост продуцента. Большая часть современных технологических решений, направленных на оптимизацию процесса биоконверсии возобновляемого сырья, основана на использовании смешанных популяций из двух и более микроорганизмов, взаимодополняющих друг друга своими ферментными системами.
Устойчивость процесса может быть достигнута путем применения микроорганизмов, между которыми существуют симбиотические взаимоотношения. Такие ассоциации могут способствовать повышению производительности процессов. Классический пример подобной ассоциации, издавно применяемой человеком и наиболее изученный, с точки зрения взаимодействия микробных компонентов в ней, смешанная культура дрожжей и молочнокислых бактерий. Молочнокислые бактерии в таком симбиозе сохраняют свою активность в течение многих месяцев без пересевов, дрожжи активно потребляют молочную кислоту, продуцируемую микроорганизмами, обеспечивая их биологически активными веществами. В результате длительного сосуществования возникает симбиотическая культура, несущая повышенные физиологические показатели. Характерный пример смешанных культур естественного происхождения, сообщества микроорганизмов, живущих за счет целлюлозы. В природе целлюлоза разрушается только в условиях совместного и последовательного воздействия различных микроорганизмов. Сопутствующая микрофлора снижает потенциал среды и обогащает ее белком. Различные ассоциации микроорганизмов образуются в зависимости от условий экологических ниш, так деградацию целлюлозы в морских условиях осуществляют целлюлозоразрушающие бактерии и гетеротрофные спирохеты; хитин – смешанная культура клостридий и сахаролитических бактерий. Бактериальные ассоциации, гидролизующие целлюлозлигниновые субстраты, могут выделяться из естественных источников и использоваться для повышения питательной ценности соломы. Деструкция рисовой соломы смесью целлюлолитических грибов способствует повышению выхода сахаров более чем в 3 раза, что объясняется явлением синергизма в действии гидролитических ферментов. Устойчивости смешанных культур обычно добиваются методом проб и ошибок, но для достижения устойчивого равновесия смешанных культур рекомендуется использовать микроорганизмы, различающиеся по способности к окислению субстрата, что справедливо и для моносубстратов. Силосование растительной массы – один из видов твердофазной ферментации. Его недостатком является протекание в условиях аноксии и как следствие низкое накопление биомассы микроорганизмов. Однако для данного способа характерно: низкие затраты труда и энергии, а также его доступность и привычность. В этой связи ведутся работы по изысканию возможности воздействия при этом на целлюлолитический комплекс растительного сырья с целью повышения питательности корма. Предложен способ силосования соломы, после ее предварительной обработки ферментным препаратом целловиридином ГЗх. Предложен способ силосования соломы путем внесения в обрабатываемую массу ферментных препаратов и бактериальной закваски(МКБ и ПКБ ). Разработан способ ферментативной обработки пшеничной соломы; в основе препарата лежит биомасса гриба Trichoderma – lignorum – 19. Однако широкому распространению способа препятствует ограниченная возможность выработки его в больших количествах, т.к. на 1 тонну соломы вносится 50 килограмм препарата. Институтом микробиологии и вирусологии БАН Республики Казахстан разработан и внедрен способ силосования соломы с помощью гетероферментативных пентозосбраживающих молочнокислых бактерий Lact.pentoaceticum шт., при котором резко повышается поедаемость корма, накапливается молочная кислота; однако, питательная ценность остается без изменения. Кроме того, закваска не исключает добавления в силосуемую массу углеводосодержащих компонентов. Для получения кормов с повышенной питательностью, перспективным является возможность гидролитического воздействия на целлюлозу, с тем, чтобы сельскохозяйственные животные получали корм уже в предобработанном виде. Многие способы обработки соломы, направленные на повышение переваримости и усвоения ее питательных веществ, действуют двояким образом. Во-первых они разрывают ковалентные связи между лигнином и питательными веществами – клетчаткой, гемицеллюлозами и другими органическими веществами клеточной стенки соломы. Вовторых производят гидролиз (разрыв) ионных связей в сложных веществах (полимерах), превращая некоторое количество их в свободные мономеры. Так, часть целлюлозы, гемицеллюлозы и часть других полимерных соединений будет отщеплять легкорастворимые в воде моносахариды, в том числе глюкозу, фруктозу, ксилозу, рибозу и другие. Поэтому в обработанном сырье содержание легкоусвояемых сахаров всегда выше, чем в необработанном. Осахаривание целлюлозосодержащих субстратов (в частности лузги подсолнечника) путем барометрического гидролиза с последующей обработкой целлюлазами, полученными от гриба Trichoderma, способствует более интенсивному гидролизу гемицеллюлоз и пектиновых веществ. Однако содержание безводной глюкозы и целлюлозы почти не меняется. Кроме того, практика широкого внедрения как у нас так и за рубежом, не оправдала себя из-за высоких затрат энергии и отсутствия ожидаемых результатов. Использование целлюлоразлагающих бактерий для гидролитического воздействия на целлюлозу ранее не практиковалось, т.к. они как правило требуют для своей жизнедеятельности щелочной среды, что в нестерильном сырье вызывает бурное развитие нежелательной микрофлоры, в частности гнилостной, и продукт быстро портится. Была поставлена задача выделения новых штаммов бактерий – продуцентов целлюлолитических ферментов, способных развиваться в условиях силоса хорошего качества при рН = = 4,0-4,5, в анаэробных условиях, непатогенных, нетоксичных. Поскольку непременное условие силосования накопление молочной кислоты, параллельно ведется селекция молочнокислых бактерий (Е.Г.Владимирова с соавт., 1991а, б; 1992б, г; 1993, 1995; М.Г.Саубенова с соавт., 1994; Г.В. Карпова с соавт., 1994а, 1999, 2002, 2004б, 2005а).
Основная цель переработки и подготовки кормов к скармливанию – увеличение их потребления, повышение переваримости. При этом появляется возможность использовать материалы, которые без предварительной обработки практически несъедобны, к таким относятся отходы зерноперерабатывающей промышленности – лузга подсолнечника, шелуха гречихи и проса. В масложировой промышленности перерабатывается ежегодно до 10 миллионов тонн различных маслосемян с получением около трех миллионов тонн масла и до четырех миллионов тонн шротов и жмыхов. Вместе с тем имеются побочные отходы и продукты, которые мало используются в промышленных масштабах. Доказано, что протеины отходов подсолнечника – лузги – обладают вполне благоприятным аминокислотным составом и могут применяться в качестве белкового компонента в кормовых смесях не только для крупного рогатого скота, но и свиней, птицы. Энергетическая ценность одного килограмма отходов в зависимости от обработки и качества сырья колеблется от 0,82 до 1,28 кормовых единиц. Лузга семян подсолнечника бедна минеральными и азотсодержащими веществами (от 4,3 % до 8,9 %), но богата клетчаткой (от 43,2 % до 61,1 %).В образцах, полученных при механической очистке лузги, содержится до 2 % жира (Г.В.Карпова с соавт 1992а, в; 1993,1994а; Е.Г.Владимирова с соавт., 1991, 1993, 1995).
Переваримость питательных веществ подсолнечной лузги составляет: сырого протеина -13 %; сырого жира – 5 %; сырой клетчатки -10 %; БЭВ – 17 %. Из-за низкого использования в организме животных питательных веществ подсолнечной лузги последняя на кормовые цели используется в ограниченных количествах. Основная масса (свыше 400 тысяч тонн) расходуется на топливо. Положительные результаты по применению отходов масложирового производства получены в овцеводстве. Добавление в рацион лактирующих коров кормовой добавки на основе подсолнечной лузги в течение 122 дней способствовало повышению среднесуточного надоя: у контрольной группы 16,2 кг молока, при жирности – 3,78 %, у опытной группы соответственно 18,0 кг молока и 3,87 % жирность. Изучена эффективность использования подсолнечной лузги в кормлении молодняка КРС и установлен лучший рост в опытной группе – на 8,1 %. Доказано, что использование в рационах сельскохозяйственных животных лузги подсолнечника не оказывает вредного влияния на организм, но позволяет снизить затраты кормов на единицу продукции и ее себестоимость. Установлено, что переваримость питательных веществ подсолнечной лузги составляет: сырого протеина 18 %, сырого жира 4,5 %, сырой клетчатки 10 %, БЭВ 17 %. По питательности лузга близка к сену низкого качества. Крупяная промышленность при переработке гречихи и проса получает от 18 % до 20 % отходов, частично они используются в сельском хозяйстве в виде грубых кормов; в частности на корм эффективно используется гречневая мякина, отходы от очистки и сортировки зерна, от переработки его на крупу; просяная и гречневая солома. Отходы гречихи, получаемые при очистке, хорошо поедают куры, индейки, цесарки. Мясо птицы, которой скармливают гречишные отходы, приобретает более высокие вкусовые качества. Однако гречишная шелуха, составляющая до 20 % от веса семян в кормовых целях не используется, а сжигается в топках или служит упаковочным материалом. В то же время шелуха содержит значительное количество железа, фосфора, меди, некоторые органические кислоты, состоит преимущественно из пентозанов и клетчатки, несущих в себе определенное количество энергии органических соединени. Один килограмм гречишной шелухи содержит 0,18 кормовых единиц, 24 грамма переваримого протеина, 10,7 грамма кальция, 1,4 грамма .фосфора, 12 мг. каротина. Просяная шелуха один из отходов от переработки проса на крупу. В белковом комплексе его шелухи преобладают труднорастворимые белки, альбуминов и глобулинов – сравнительно мало. Шелуха содержит значительное количество клетчатки, вследствии чего практически не переваривается желудком жвачных. Из микроэлементов встречаются цинк, медь, бром, хлор. Основной фактор, препятствующий усвоению шелухи проса жвачными животными – повышенная зольность (11,25 %). Зольные вещества в основном входят в состав солей кремниевой кислоты и не усваиваются организмом животных. Один килограмм просяной шелухи содержит 0,2 кормовые единицы (Е.Г.Владимирова с соавт. 1991, 1993; Г.В.Карпова с соавт., 1991в; 1993; 1994б, в).
Проведенные опыты по скармливанию отходов зернопереработки, измельченных на молотковой дробленке показали, что поедаемость такой шелухи удовлетворительная; в опытах с КРС получены положительные результаты, привесы. Однако, практически во всех опытах скармливание дробленой шелухи, без какой-либо дополнительой обработки, приводило к воспалению слизистых оболочек желудка, что говорит о необходимости обязательной обработки лузги или шелухи (химической, биологической, физической) для получения более мягкой структуры и снижения содержания клетчатки, т.к. наличие в кормах целлюлозы более от 16 % до 22 % угнетает рубцовую ферментацию.
Внимание! Это не конец книги.
Если начало книги вам понравилось, то полную версию можно приобрести у нашего партнёра - распространителя легального контента. Поддержите автора!Правообладателям!
Данное произведение размещено по согласованию с ООО "ЛитРес" (20% исходного текста). Если размещение книги нарушает чьи-либо права, то сообщите об этом.Читателям!
Оплатили, но не знаете что делать дальше?