Текст книги "Оценка эффективности работы очистных сооружений по гидробиологическим показателям. Руководство по контролю за работой очистных сооружений биологической очистки сточных вод в аэротенках"

Оценка эффективности работы очистных сооружений по гидробиологическим показателям
Руководство по контролю за работой очистных сооружений биологической очистки сточных вод в аэротенках
О. В. Трифонов

© О. В. Трифонов, 2016

Создано в интеллектуальной издательской системе Ridero

Введение

Самым распространенным способом очистки бытовых, городских и ряда промышленных сточных вод на сегодняшний день является биологическая очистка методом искусственного аэрирования в специальных сооружениях-бассейнах, получивших название «аэротенки». Процесс очистки в них осуществляет так называемый «активный ил» – особое сообщество микроорганизмов различных таксономических групп (бактерий, грибов, вирусов, одноклеточных и многоклеточных беспозвоночных). Состав такого сообщества формируется самостоятельно. Организмы активного ила не рассеиваются равномерно в сточной воде, а образуют своеобразные хлопьевидные структуры, легко оседающие при непродолжительном отстаивании.

Метод очистки сточных вод искусственным аэрированием был открыт английским химиком Диброном. В 1887 году он писал, что сточная жидкость может быть очищена путем ее выдерживания в условиях энергичного аэрирования в смеси со специальной культурой организмов. Англичане Ардерн и Локетт (Ardern, Lockett) впервые в 1916 г. построили аэротенки в Манчестере; они же впервые ввели термин «активный ил». С тех пор накоплен богатый фактический материал о видовой структуре, морфологии, экологии, динамике сообщества активного ила, что дало возможность совершенствовать технологию очистки воды.

Основную роль в биологической очистке сточной воды играют бактерии. Они способны разрушать любые органические соединения естественного происхождения и некоторые неорганические (нитраты, нитриты, хроматы, сульфаты, фосфаты и т.д.). Бактерии обладают гораздо большей, по сравнению с другими организмами активного ила, устойчивостью к действию ядовитых веществ. Часто при поступлении на очистные сооружения сточных вод, содержащих высокотоксичные соединения, бактерии остаются единственными обитателями аэротенков. Кроме того, бактерии быстро «приобретают» способность утилизировать ранее не существовавшие в природе соединения (детергенты, лекарственные препараты, пестициды и др.). Количество бактерий в активном иле достаточно велико и составляет от 10⁸ до 10¹⁴ клеток на 1 г сухого вещества. Состав бактериального населения активного ила в первую очередь определяется составом обрабатываемой воды и условиями, в которых осуществляется процесс очистки. Бактерии, присутствующие в илах городских очистных сооружений, являются представителями родов Pseudomonas, Bacillus, Alcaligenes, Achromobacter, Flavobacterium, Corynebacterium, а также семейства энтеробактерий.

Кроме бактерий активную роль в очистке воды от органических соединений играют грибы. Однако в обычных условиях их количество незначительно. Развиваются, в основном, многоклеточные плесневые грибы (Fusarium, Nematosporangium и др.), но иногда появляются грибы с одноклеточным мицелием (Mucor) и дрожжи. В водной среде грибы размножаются в основном вегетативным способом, плодовые тела не образуют, и поэтому их определение весьма затруднительно. Массовое развитие грибов нежелательно, т.к. их мицелий препятствует оседанию активного ила. В то же время при очистке некоторых видов сточных вод, содержащие трудноокисляемые и токсичные соединения, в частности фенолы, возможно применение грибных илов, способных эффективнее, чем бактерии, утилизировать эти примеси.

Из животного населения очистных сооружений наиболее многочисленны простейшие: Mastigophora (жгутиконосцы), Sarcodina (амебы), Ciliophora (инфузории). Их функции в активном иле весьма многообразны. Прежде всего, питаясь бактериями, простейшие регулируют их численность в илах и способствуют омоложению ила. Простейшие выполняют также санитарную роль, поедая наряду с сапрофитными бактериями и патогенные микроорганизмы. Установлено, что в присутствии простейших снижение численности БГКП (бактерий группы кишечной палочки) происходит в несколько раз быстрее, чем в чисто бактериальных илах. Важнейшая функция простейших – очистка воды от взвешенных веществ. Прозрачность сточной воды в присутствии простейших значительно повышается. Пропуская через свой организм мелкие взвешенные в воде частицы, простейшие склеивают их и выбрасывают обратно в воду уже в виде сравнительно крупных, легко оседающих компактных комочков.

Кроме простейших фауна аэротенков представлена многоклеточными беспозвоночными (коловратками, нематодами, олигохетами, брюхоресничными червями, тихоходками и др.). Являясь организмами 2 и 3-го трофического уровня пищевой цепи они не только очищают воду от взвешенных частиц и свободных бактерий, но и, поедая хлопья активного ила, способствуют снижению его прироста, и тем самым затрат, связанных с утилизацией приросшей биомассы.

Развитие того или иного вида беспозвоночных определяют условия окружающей среды, поэтому по присутствию некоторых организмов, развивающихся в иле в большом количестве, можно судить об условиях, вызвавших их развитие. Микрофауна активного ила более чутко, чем бактерии, реагирует на любые нарушения технологического режима и связанное с ним ухудшение качества очищенных сточных вод. Вследствие этого представители микрофауны выполняют функцию индикаторов процесса очистки воды в биоокислителях. Использование биологических индикаторов дает возможность не только оценивать качество очистки воды, но и выявлять причины нарушения нормальной работы аэротенков. Поэтому, гидробиологический анализ активного ила является одной из важнейших составляющих технологического контроля работы очистных сооружений. От своевременности и правильности оценки состояния активного ила по гидробиологическим показателям напрямую зависит работа всего комплекса очистных сооружений, а, следовательно, и экологическая обстановка в водоемах-прёмниках сточных вод.

Гидробиологический и гидрохимический
анализ активного ила

Для характеристики работы сооружений биологической очистки сточных вод на станциях в лабораторных условиях осуществляется гидробиологический и гидрохимический анализ активного ила.

Гидробиологический анализ заключается в оценке состояния и структурных особенностей активного ила, организмы которого обладают способностью реагировать качественным изменением и количественным распределением отдельных групп на состав и свойства очищаемых сточных вод, а также на условия жизнеобеспечения, регулируемые режимом эксплуатации сооружений.

Гидрохимический анализ заключается в определении количества активного ила в аэротенках, а также его свойств (способности к оседанию, биохимической активности и др.).

На основании проведенных анализов делается общее заключение о состоянии активного ила и эффективности процесса очистки воды. В случае выявления отклонений от нормы вносятся рекомендации по изменению или корректировке технологического режима работы аэротенков, необходимых для устранения неблагоприятных факторов, ухудшающих эффективность очистки сточных вод.

1. Средства измерений, вспомогательные устройства, материалы, реактивы, необходимые для осуществления гидробиологического и гидрохимического анализа

1.1. Средства измерений и вспомогательные устройства:

– микроскоп бинокулярный х100—1350;

– микроскоп люминесцентный х100—1350;

– микроскоп стереоскопический (МБС) х3,5—100;

– окуляр-микрометр с измерительной линейкой;

– объект-микрометр;

– устройство для наблюдения методом фазового контраста;

– весы лабораторные общего назначения;

– сушильный электрический шкаф общелабораторного назначения;

– часы сигнальные;

– холодильник для хранения проб;

– счетные камеры типа камер Кольвитца, Горяева, Нажотта, Тома, Фукса-Розенталя;

– пробоотборник любого типа объемом 500—700 см³;

– ящики для переноски проб (облегченного типа), с гнездами и уплотнением для перевозки проб в машине;

– иглы для препарирования;

– пинцеты мягкие и жесткие;

– бумажные фильтры обеззоленные для количественного весового анализа (красная, белая ленты);

– стекла покровные для микропрепаратов размером 24x24 мм (толщина не более 0,15—0,17 мм);

– стекла предметные (толщина не более 1,1—1,4 мм);

– чашки Петри диаметром 40 мм и более;

– лабораторные стаканы или мерные колбы на 100—200 см³,

– пипетки или дозаторы на 0,1 и 1см³

– воронки лабораторные;

– стаканчики для взвешивания (бюксы);

– эксикаторы;

– насосы вакуумные водоструйные;

– цилиндры мерные вместимостью 100 см³;

– бутыли из стекла или полиэтилена с притертыми или винтовыми пробками вместимостью 500—3000 см³ для отбора и хранения проб;

– вода дистиллированная.

1.2. Реактивы для фиксации и окрашивания простейших

Наркотизирующие препараты:

– спирт этиловый 96°(этанол);

– формалин 4—10%-ный водный раствор;

– уксусная кислота 0,1%-ный водный раствор;

– сульфат никеля 1%-ный водный раствор;

– новокаин 2%-ный водный раствор (фармацевтический препарат);

– тизерцин (левомепромазин) 10%-ный водный раствор (фармацевтический препарат);

– фиксатор Утермеля: в 20 см³ дистиллированной воды с 5 г дважды сублимированного йода растворяют 10 г йодида калия, добавляют 50 см³ дистиллированной воды и 5 г уксуснокислого натрия, полученный раствор хранят не более 1 месяца в склянке из темного стекла с притертой пробкой.

Красители:

– нейтральный красный, 0,1%-ный водный раствор;

– жидкость Люголя на глицерине (3 см³ дистиллированной воды, 94 см³ глицерина ч. д. а., 1 г кристаллического йода., 2 г йодистого калия);

– йод 0,3%-ный водный и 1%-ный спиртовой растворы;

– акридиновый оранжевый гидрохлорид – витальный люминесцентный краситель;

– метиленовый синий ч. д. а.;

– азотнокислое серебро 2%-ный водный раствор.

1.3. Условия выполнения гидробиологического анализа

При выполнении гидробиологических анализов необходимо соблюдать требования техники безопасности при работе с химическими реактивами по ГОСТ 12.4.021, а также соблюдать антисептические меры предосторожности при работе с активным илом, который содержит потенциально патогенные организмы:

– работать в спецодежде;

– следить за состоянием кожи на лице и руках, раны и ссадины смазывать йодом;

– не допускать разбрызгивания или попадания сточных вод на руки, поверхность стола, оборудование, одежду;

– тщательно убирать и вытирать рабочее место, тщательно мыть руки после работы;

– своевременно мыть бывшие в употреблении стеклянные предметы горячей водой с мылом.

2. Подготовка к выполнению определения

Предварительная подготовка к отбору проб должна обеспечивать полную безопасность работ, подготовку посуды, пробоотборников, места хранения отобранных проб, а также подготовку рабочего места для обработки доставленных в лабораторию проб.

2.1. Подготовка посуды, предметных и покровных стекол

Посуду, предназначенную для проб, тщательно моют синтетическим моющим средством и ополаскивают водой. Посуда должна быть пронумерована карандашом по стеклу.

Счетные камеры, стандартные предметные и покровные стекла перед употреблением необходимо обезжирить.

Покровные стекла, не бывшие в употреблении, обрабатывают смесью равных частей спирта и эфира (смесь Никифорова), такой же смесью следует регулярно обрабатывать открытые оптические части микроскопа. Перед употреблением покровные и предметные стекла вытирают мягким полотенцем.

Поверхность стекла должна быть совершенно чистой. Капля воды, нанесенная на стекло, должна равномерно растекаться по нему, не собираясь в мелкие капельки, что является признаком того, что стекло хорошо обезжирено.

2.2. Отбор и хранение проб

Отбор проб воды из аэротенков для гидробиологического и гидрохимического анализа производится в водосборном канале, по которому иловая смесь направляется во вторичный отстойник. Отбор осуществляется специальным пробоотборником или ковшом, который погружают в иловую смесь на глубину 0,5 м в месте, где происходит интенсивное перемешивание (аэрация) жидкости. На станциях, осуществляющих очистку в аэротенках-вытеснителях, допускается отбор проб в конце последнего коридора аэротенка (на расстоянии 0,5—1,5 м от водослива) в зоне интенсивного перемешивания, либо непосредственно на водосливе. Если аэротенки работают с регенерацией ила, то необходимо отбирать пробы так же и из регенераторов. В этом случае отбор осуществляется в конечной точке регенерации (на расстоянии 0,5—1,5 м. от места смешения активного ила со сточной водой). Объем отобранной пробы (для ежедневного анализа) должен составлять не менее 0,5 дм³.

Отобранную иловую смесь переливают в склянку с широким горлом и, не закрывая, доставляют в лабораторию. Размер склянки для транспортировки проб подбирают таким образом, чтобы отобранная проба занимала не более 2/3 ее объема.

Время от отбора пробы до ее анализа необходимо сократить до минимума, к анализу следует приступать не позднее 30—40 мин с момента взятия пробы, после того как температура смеси активного ила сравняется с температурой помещения. При невозможности проведения анализа в указанный срок пробы активного ила охлаждают до +3—+4 °С, и хранят не более 24 часов после отбора. Консервация проб не допускается. Перед анализом пробу тщательно перемешивают. Температура пробы должна соответствовать температуре помещения, в котором она находится.

Для получения репрезентативных данных необходимо, что бы все нижеприведенные анализы выполнялись из одной отобранной пробы.

3. Гидробиологический анализ активного ила

Полный гидробиологический анализ активного ила состоит из следующих этапов:

1. Визуальное исследование ила в стеклянном цилиндре и под микроскопом;

2. Определение видового состава организмов (прежде всего имеющих индикаторную ценность);

3. Описание функционального состояния, особенностей внутреннего строения, морфологических изменений у индикаторных организмов;

4. Определение численности организмов (абсолютной, относительной);

5. Объединение организмов в индикаторные группы (на основании визуального наблюдения или точного учета численности индикаторных видов);

6. Итоговая оценка сообщества, отнесение его к одному из определенных типов, характеристика установленного типа; подготовка гидробиологического заключения.

Полный гидробиологический анализ активного ила (за исключением определения абсолютной численности организмов) на очистных сооружениях осуществляется ежедневно. Абсолютную численность гидробионтов определяют, как правило, 1 раз в декаду (чаще, только в том случае, если работа сооружений по каким-либо причинам дестабилизируется).

3.1.1. Визуальное исследование ила в стеклянном цилиндре

Перед исследованием ила под микроскопом необходимо описать его особенности при визуальном наблюдении в стеклянном цилиндре. Для этого иловую смесь наливают в цилиндр объемом 100 см³ и оставляется на 30 мин. для оседания ила. В это время оценивается процесс оседания и хлопьеобразования: происходит ли уплотнение общей массой с четкой границей очищенной жидкости или наблюдается разрыв массы, быстро или медленно протекает флокуляция (компактные или диспергированные хлопья). Через 30 мин. отстаивания определяют цвет осевшего активного ила, запах и внешний вид надиловой воды.

Цвет активного ила во многом зависит от состава поступающих сточных вод. На станциях очистки городских стоков обычно он имеет буро-коричневую окраску. Темный, землистый ил с черным оттенком может быть следствием плохого перемешивания иловой смеси и недостатка кислорода или плохой циркуляции ила (залеживание, загнивание ила).

Запах ила должен быть болотным, без преобладания запаха каких-либо химических веществ. Резкий, неприятный запах говорит о нарушении процесса очистки (загнивании ила, недостаточной степени очистки воды и др.)

Надиловая вода должна быть прозрачная, не окрашенная, не опалесцирующая. Прозрачность зависит от глубины окисления загрязняющих веществ и от качества отделения активного ила. Мутная вода или вода, содержащая мелкую взвесь хлопьев ила, свидетельствует о нарушении процесса очистки.

Визуальное исследование ила можно проводить в ходе анализа по определению дозы ила по объему (п. 4.1.)

3.1.2. Визуальное исследование ила под микроскопом

Для визуального исследования активного ила под микроскопом, а также определения видового состава гидробионтов и их физиологического состояния пробу ила тщательно перемешивают. Затем с помощью дозатора (объемом 1 см³) наносят на предметное стекло несколько капель иловой смеси, покрывают покровным стеклом и просматривают под микроскопом.

Вначале микроскопирование проводят при малом увеличении 100. При этом отмечают размер хлопка, его структуру (плотный, рыхлый, прозрачный), однородность и засоренность ила посторонними включениями.

3.2. Определение видового состава организмов

После визуального исследования ила под микроскопом можно приступать к установлению его видового состава. Для этого необходимо обладать навыками определения тех или иных групп организмов.

Определение видового состава активного ила осуществляется, как правило, на живом материале. Фиксирование проб допускается только для определения видовой принадлежности некоторых групп многоклеточных беспозвоночных и водорослей (используют фиксатор Утермеля: 3—6 капель фиксатора на 100 см³ пробы; такую пробу можно хранить при комнатной температуре). Простейшие, жгутиконосцы, голые амебы определяются исключительно в живом состоянии.

Одним из важных критериев, используемых при идентификации организмов, является его размер, поэтому необходимо проводить тщательное измерение линейных параметров определяемых организмов. Измерение производят с помощью окуляр-микрометра. Цену деления окуляр-микрометра для каждого увеличения микроскопа определяют по масштабной линейке объект-микрометра. Для этого объект-микрометр помещают на столик микроскопа и, достигнув резкости (световой поток необходимо уменьшить), сравнивают число делений окуляр-микрометра с таковыми на линейке объект-микрометра, после чего вычисляют цену деления окуляр-микрометра.

Определение мелких и средних форм (до 50 мкм) удобно производить при увеличении микроскопа 200—400. Крупные виды (от 50 до 400 мкм) определяют при увеличении 50—100 с использованием как бинокулярного, так и стереоскопического микроскопа. В последнем случае пробу ила помещают в чашку Петри диаметром 40 мм и просматривают под покровным стеклом.

Для того чтобы досконально изучить внешнее и, при необходимости, внутренне строение изучаемых организмов их необходимо обездвижить и окрасить некоторые клеточные структуры (чаще всего ядро, реснички, жгутики и пищеварительные вакуоли).

3.2.1. Фиксация и окрашивание простейших активного ила

Для фиксации простейших и многоклеточных беспозвоночных обычно используют этиловый спирт (1—2 капли у покровного стекла), формалин 4—10%-ный водный раствор. Но применять эти препараты следует с осторожностью, поскольку при передозировке организмы сильно деформируются, сжимаются.

Сульфат никеля (1%-ный водный раствор) используют для наркоза коловраток. Остановить или замедлить движение червей и коловраток можно также глицерином. Предварительно к капле воды с живыми коловратками на предметном стекле добавляют каплю глицерина, тщательно перемешивают жидкость препаровальной иглой и рассматривают под микроскопом.

Мелких жгутиконосцев фиксируют и контрастируют в жидкости Люголя. Раствор Люголя на глицерине готовят растиранием в ступке кристаллического йода и йодистого калия с добавлением дистиллированной воды и небольших порций глицерина, постепенно доводя до объема 100 см³. Жгутиконосцев фиксируют также в 0,1%-ном растворе уксусной кислоты. Однако тонкая оболочка жгутиконосцев ограничивает применение фиксаторов, большинство из которых быстро разрушают клетки этих организмов, а обездвиженные формы мелких флагеллят трудно идентифицируются.

Можно наркотизировать жгутиконосцев 2%-ным водным раствором новокаина. Наилучшее обездвиживающее действие на простейших оказывает медицинский препарат тизерцин (10%-ный раствор на дистиллированной воде), который добавляют по 1—2 капле непосредственно у покровного стекла. Он хорошо наркотизирует и не разрушает организмы.

Для окрашивания организмов активного ила (окрашивания требуют в основном жгутиконосцы и ресничные инфузории) лучше использовать витальные (прижизненные) красители: нейтральный красный, 0,1%-ный водный раствор (растительные жгутиконосцы), метиленовый синий (животные жгутиконосцы) для выявления пищеварительных вакуолей и соматической цилиатуры у инфузорий.

Для выявления ядерного аппарат инфузорий можно использовать растворы красителей (кармина или метилового зеленого) в 2—3%-ной уксусной кислоте. Каплю с раствором красителя подпускают под покровное стекло и наблюдают за объектом под микроскопом. Уксусная кислота фиксирует объект, и ядра быстро окрашиваются в красный или зеленый цвет, в зависимости от применяемого красителя.

Жгутики флагеллят хорошо видны в жидкости Утермеля или в растворе йода (0,3%-ный водный или 1%-ный спиртовой раствор йода). Следя под микроскопом за тем, чтобы жгутиконосцы оставались в поле зрения, протягивают под покровным стеклом реактив при помощи полосок фильтровальной бумаги.

Наилучшие результаты при окрашивании всех видов жгутиконосцев дает витальный люминесцентный краситель акридиновый оранжевый. Акридиновый оранжевый можно применять для прижизненного окрашивания ядер цилиат, хроматофоров водорослей и оболочек нитчатых хламидобактерий при выявлении их трихомного строения. Акридиновый оранжевый окрашивает ядра (ДНК) в зеленый цвет, нуклеиновые кислоты (РНК) ядрышек и цитоплазмы – в красный. Раствор акридинового оранжевого готовится непосредственно перед окрашиванием (не хранится): к стерильной дистиллированной воде объемом 10 см³ добавляется 3 мг акридинового оранжевого, тщательно перемешивают, затем в 100 см³ иловой смеси вносят 1 см³ приготовленного раствора и тщательно перемешивают. Следует обращать внимание на опасность перекрашивания препаратов при избытке красителя. В этом случае макронуклеус не выделяется четко, и избыточное свечение препарата затрудняет счет всех таксономических групп организмов. Техника окрашивания занимает 10—12 мин. При окраске люминесцентными красителями объекты рассматривают только в люминесцентном микроскопе.

Для окрашивания ресничного аппарата ресничных инфузорий применяется довольно сложная техника серебрения с использованием 2%-ого водного раствора азотнокислого серебра.

Для контроля работы очистных сооружений нет необходимости в определении всех организмов активного ила до вида. В видовой идентификации нуждаются только организмы-индикаторы, а остальных гидробионтов определяют до более крупных рангов систематических или физиологических групп.

3.3. Описание функционального состояния, особенностей внутреннего строения, морфологических изменений у индикаторных организмов

В процессе определения видового состава организмов или визуального просмотра активного ила под микроскопом, описывают их функциональное состояние (активность особей, характер движения подвижных форм, работа перистомального аппарата кругоресничных инфузорий); особенности внутреннего строения организмов и морфологические изменения (форма тела, количество пищеварительных вакуолей); определяют размер некоторых характерных биоиндикаторов (последнее необходимо в том случае, если при микроскопическом исследовании выявляется их заметное измельчение).

3.4. Определение численности организмов. Методы количественного учета

После определения видовой принадлежности организмов активного ила, можно приступать к количественной обработке проб, в процессе которой определяют относительную и (или) абсолютную численность гидробионтов.

3.4.1. Относительную численность определяют визуально при просмотре пробы активного ила на предметном стекле. Оценивают встречаемость и соотношение численности тех или иных систематических групп организмов и видов-индикаторов. Отмечают доминирующие группы организмов и доминирующие виды-индикаторы, а также виды (группы), встречающиеся в умеренных количествах, редко и единично. Полученные данные сравнивают с данными предыдущего дня наблюдения. Если при визуальном наблюдении фиксируют существенное изменение соотношения численности гидробионтов, то можно говорить об изменении условий работы очистных сооружений.

3.4.2. Помимо определения относительной численности организмов активного ила, периодически необходимо определять и их абсолютное количество в единице объема иловой смеси (с пересчетом на сухую массу активного ила). Преимущества такого счета заключаются в том, что мы получаем абсолютную частоту встречаемости отдельных видов, следовательно, можем сделать более точные выводы о процессах очистки.

Для оценки абсолютной численности гидробионтов удобно пользоваться двухступенчатым методом учета. На первом этапе учитывают мелкие организмы (размером до 50—60 мкм), на втором – все крупные организмы (размером до 400 мкм).

1 этап. Для учета мелких организмов удобно пользоваться счетными камерами Горяева, Кольквитца, Нажотта, Тома, Фукса-Розенталя. Камеру накрывают покровным стеклом и притирают его до образования радужных колец интерференции, что является признаком достаточно плотно притертого стекла. Пипеткой отбирают произвольное количество тщательно перемешанной иловой смеси и заполняют камеру, следя, чтобы в нее не попадали пузырьки воздуха. После заполнения камеру оставляют на несколько минут в покое, чтобы организмы, находящиеся внутри хлопьев, вышли наружу (в первую очередь это касается голых амеб). Учет производят под бинокулярным микроскопом при увеличении 200—300. Если концентрация ила очень высокая, пробу разбавляют отфильтрованной надиловой водой из той же пробы. Просматривают все квадраты по диагонали или камеру целиком (если численность организмов незначительная). При высокой численности организмов удобно пользоваться камерами небольшого наполнения (например, Фукса-Розенталя). В каждой пробе подсчитывают виды как минимум в 3-х камерах с последующим вычислением среднего арифметического. После этого делают пересчет на 1 см³ и на 1 г сухого вещества активного ила. Объем камеры, как правило, указан на самой камере или в прилагаемой инструкции. Пересчет на 1 г сухого вещества активного ила производят по формуле:

 
N = n х 1000/W, (1)
 

где N – численность вида, экз./г ила

n – численность вида в 1 см³, экз.;

W – доза ила по массе, г/дм³ (по результатам гидрохимического анализа)

2 этап. Крупные организмы учитывают отдельно, в чашке Петри в объеме пробы 0,1 см³ при помощи бинокулярного стереоскопического микроскопы при увеличении х100. Для этого на крышке чашки Петри при помощи иглы для препарирования и линейки с нижней стороны легким надавливанием параллельно друг другу наносятся линии по всей поверхности чашки. Линии проводят на таком расстоянии друг от друга, чтобы при просмотре под микроскопом они были видны в крайнем верхнем и крайнем нижнем полях зрения при том увеличении, при котором будет производиться учет организмов. После нанесения линий дозатором (или пипеткой) отбирают 0,1 см³ пробы, выливают в центр чашки Петри и накрывают покровным стеклом 24х24. Пробу просматривают целиком. При этом необходимо помнить, что учету подлежат только те организмы, которые не были учтены на 1-м этапе. Повторность анализа 3-х кратная. Численность всех организмов пересчитывают на 1 см³ и на 1 г сухого вещества активного ила. Для пересчета на 1 г сухого вещества активного ила пользуются формулой (1).

В заключение подсчитывается суммарная численность организмов в систематических группах и в целом, которую так же выражают в экз./см³ и экз./г сухого вещества активного ила.

3.5. Объединение организмов в индикаторные группы

После подсчета организмов производят распределение видов-индикаторов по группам (основные критерии распределения – это пищевые потребности биоиндикаторов, их отношение к концентрации растворенного кислорода, устойчивость к воздействию токсичных сточных вод). По преобладанию той или иной индикаторной группы можно делать заключение о состоянии активного ила и процессе очистки воды.

Окончательное гидробиологическое заключение делают после проведения гидрохимического анализа ила.