Текст книги "Иммунные стимуляторы в ветеринарии"

П.А. Карасев (1962), изучая эффективность применения тканевых препаратов в животноводстве, установил, что под их влиянием лучше выявляется охота овец, а у свиноматок, долгое время не приходящих в охоту, нормализуются функции органов размножения. Однако К.Н. Чекурда, С.А. Векслер (1963) нашли, что тканевый препарат малоэффективен для активации половой функции, т. к. он трудно инъецируется, а на месте введения нередко появляются абсцессы.

У здоровых коров под влиянием тканевого препарата повышается секреция молока на 10,3 %, увеличивается количество жира и молочного сахара (А.Ф. Кузьмин, П.А. Федько, 1962). Об увеличении удоя коров сообщает и П.Ф. Симбирцев (1962). В его опытах в период массового лета кровососущих насекомых, оводов коровы опытной группы не только не снизили удой, как это имело место в контрольной группе, а даже несколько увеличили его.

Тканевые препараты с успехом применяют с целью повышения продуктивности птицы. По данным Е.С. Шулюмовой (1972) включение сухого тканевого препарата в кормовой рацион птиц облегчает его применение и способствует повышению приростов цыплят на 11–16 %, яйценоскости кур на 13–19 %, выводимости их яиц и улучшению развития цыплят. Кроме того он выявил, что в сухом тканевом препарате содержатся витамины А, B₁, В₂, B₁₂, а в состав протеина входят все незаменимые аминокислоты. Поэтому в сухом тканевом препарате, действующем началом, является не только биогенный стимулятор, которому, безусловно, принадлежит ведущая роль, но и белковый комплекс с минеральными веществами, витаминами, также оказывающими положительное влияние на организм.

М.И. Рабинович (1972) в смеси с кормом (по 0,5 г на голову) курам давал сухой биостимулятор из селезенки. Это повысило яйценоскость птицы на 40 %, сократила затраты корма на получение одного яйца на 17,6 %. При этом существенная разница в живой массе и показателях крови у кур не установлена.

При изучении влияния биостимуляторов на морфологический состав крови многими учеными установлено, что у животных наблюдается увеличение количества эритроцитов, гемоглобина и лейкоцитов в пределах физиологической нормы (А.С. Костенко,С. Ледяйкина, 1962; К.М. Солнцев, 1963; Р.Х. Хаитов, Л.К. Гарумянц и др., 1964; В.И. Божко, 1964; Б.Я. Передера,1964; В.А. Блинов, А.Б. Миронов и др., 2000; Л.Е. Бояринцев, 2000; Е.В. Крапивина, В.П. Иванов и др., 2001; Ф.Ф. Асадуллина, В.Р. Хусаинов, 2002; А.Р.Фаррахов, 2002).

По данным рядов авторов (И.И. Заболотный (1964), В.И. Божко (1964), Е.П. Дементьев (2000), Ш.Ф. Каримова (2003)), биогенные стимуляторы оказывают существенное влияние на кроветворную функцию костного мозга клинически здоровых подсвинков.

Увеличивается количество эритроцитов, содержание гемоглобина, общего количества гранулофилоцитов вследствие оживления регенеративной функции костного мозга. Об увеличении содержания общего белка в крови животных под влиянием биостимуляторов пишут В.Б. Дорошков (1964), A.M. Силков (1964), А.Ш. Сулейманов (1964), И.Б. Гладкова (1971), P.P. Гизатуллин (2000), Е.П.Дементьев, В.Б. Галямшин и др. (2002). И в то же время В.И. Георгиевский, (1989), А.Г. Маннапов (2000), Е.П. Дементьев (2001), Ш.Ф. Каримова (2003), сообщают, что существенной разницы по содержанию общего белка и его фракций они не обнаружили.

В данных по исследованиям влияния тканевых препаратов на организм животных указывается на увеличение γ-глобулинов при одновременном уменьшении альбуминов (Ф.Н. Милованов, 1962; И.М. Голосов, 1964; Б.В. Дорошков, 1964; И.Б. Гладков, 1971).

В.В. Ковальский (1962) сообщает об уменьшении содержания γ-глобулинов при увеличении альбуминовой фракции белков.

Как полагает И.И. Ярошенко (1964), увеличение уровня резервной щелочности у опытных животных по сравнению с контролем говорит о активации окислительно-восстановительных процессов в организме. В его опытах установлено снижение уровня кальция и уменьшение фосфора в сыворотке крови. О повышении содержания кальция и одновременном уменьшении калия пишет Е.С. Шулюмова (1962).

В работах И.И. Заболотного (1964) и В.И. Божко (1964) отмечено, что биогенные стимуляторы оказывают влияние на кроветворную функцию костного мозга. Вследствие оживления регенеративной функции костного мозга наряду с повышением гемоглобина и эритроцитов в крови увеличивается общее количество гранулофилоцитов, повышается коэффициент регенерации миэлобластических и эритробластических клеток в таких органах как печень, почки, тонкий кишечник, сердечная мышца. Наиболее выражено это нарастание показателей крови с 10 по 25-й день введения стимулятора.

Опытами В.В. Ковальского (1962) установлено, что введение тканевых препаратов вызывает изменение активности ферментов каталазы и амилазы крови свиней, обуславливая этим адаптивные и качественные изменения ферментов и некоторых белковых веществ крови. Ферментные системы нормализуют важные функции животного организма, улучшают выработку иммунных тел, усиливая сопротивляемость организма к неблагоприятным условиям.

Показательны данные по изучению влияния биостимуляторов на естественную резистентность.

С.В. Сапожников (1957), Н.М. Голубева (1957), Г.М. Кащеева (1964), П.А. Федько (1964), П. Константинов (1972), Д.М. Жидков (1975), Б.С. Кубарский (1979), Г.Х. Бакирова, А.А. Бакиров (1999), В.В. Субботин и др., (2000), А.А. Крыканов (2000), Г.М. Топурия, Л.Ю. Топурия (2002) отмечают, что эти препараты стимулируют иммунобиологическую реактивность организма, которая выражается в активации фагоцитоза.

Одним из важнейших показателей улучшения состояния организма под влиянием тканевых препаратов является увеличение пропердина а крови, играющего важную роль как защитный фактор (И.В. Савицкий, 1964).

Тканевые препараты способствуют усилению тканевого дыхания, что подтверждается повышением активности фермента глюцерофосфатдегидроге-назы, а также довольно быстрому окислению кетокислот и уменьшению концентрации углеродсодержащих продуктов в моче (И.В. Савицкий, 1964).

Многие ученые дают высокую оценку действию тканевых препаратов, оказывающих стимулирующее влияние на функции животного организма, секреторную и моторную деятельность желудочно-кишечного тракта.

Все они оказывают одинаковое влияние на качественные изменения желудочного сока. При этом как свободная, так и общая кислотность резко повышаются, увеличивается переваривающая сила желудочного сока при повышении аппетита и повышается усвояемость кормов (И.О. Иона и др., 1957; Ф.Н. Милованов, 1962; П.Ф. Симбирцев, 1962; К.М. Солнцев и др., 1963; Б.С.Кубарский,1979).

В опытах А.Ф. Сенюшкина (1964) после введения тканевого препарата в соке двенадцатиперстной, подвздошной, ободочной кишок овец повысилась активность энтерокиназы, липазы, фосфатазы. Повышенная активность кишечных ферментов после введения препарата, по мнению автора, улучшает расщепление в кишечнике белков, жиров, углеводов и их всасывание. Это, несомненно, стимулиет обмен и способствует большему приросту массы животных.

А.С. Костенко и др., (1962) изучали влияние на утят тканевого препарата из печени и селезенки. Установлено повышение общей кислотности, свободной соляной кислоты, интенсивности желудочной секреции, переваривающей силы желудочного сока. При этом наиболее эффективным оказался препарат из печени, нежели препарат из селезенки.

Об увеличении всасывания глюкозы на 20 % у собак под влиянием тканевого стимулятора сообщают P.O. Файтельберг, А.Ф. Кузьмин и др., (1964).

Препараты консервированных тканей оказывают сложное воздействие на организм. Они обладают выраженной способностью повышать его иммунобиологические свойства, регенеративную способность, сопротивляемость патогенным факторам и его функции защитных механизмов (С.Р. Мучник, 1962).

Значительный интерес представляют наблюдения, показавшие, что тканевые препараты обладают выраженным свойством снимать или значительно ослаблять состояние парабиоза пораженной ткани и способствовать восстановлению её нормальной чувствительности и реактивности (С.Р. Мучник, 1964).

Доказано целесообразность использования тканевых препаратов совместно с лекарственными веществами, антибиотиками, гормональными средствами.

По данным П.А. Федько (1964), тканевые препараты, как при самостоятельном их применении, так и при применении с пенициллином стимулируют иммунобиологическую реактивность организма кроликов, что выражается в повышении фагоцитоза, титра гемолизина и агглютинина.

И.А. Калашник (1962) сообщает о том, что тканевые препараты из печени, селезенки крупного рогатого скота, семенников жеребца стимулируют регенеративные процессы в ране, сокращают по сравнению с контролем на одну треть сроки заживления ран и переломов костей, ускоряют формирование костной мозоли.

Основными заболеваниями молодняка являются бронхопневмония и диспепсия.

В.Д. Баланюк (1962) в учхозе Одесского СХИ применял биостимулятор при лечении телят. Если до применения тканевого препарата в хозяйстве болело 35 % новорожденных телят, то после его применения – только 5 %.

В.Г. Семенов (1996) исследовал влияние “Достима” и “Полистима” на организм телят при пониженных (-1-4^oС) температурах содержания. Стимулятор инъецировали внутримышечно в дозе по 3 мл на 1 и 5-й день жизни. Такая стимуляция способствовала повышению массы тела, среднесуточного прироста, улучшению показателей экстерьера и усилению неспецифической резистентности организма. При этом стимулирующее действие “Полистима” на гемопоэтическую функцию организма проявлялось более выраженно, нежели у “Достима”.

Если использование “Достима” оказывало преимущественно иммуностимулирующее воздействие на клеточные, то применение “Полистима” – влияло одновременно как на клеточные, так и гуморальные факторы иммунитета.

На основе проведенных опытов А.В. Макашов, Г.Г. Евтеев и др., (1957) приходят к выводу о том, что не специфичность действия тканевых препаратов позволяет рекомендовать их при некоторых хирургических заболеваниях, где они могут применяться как самостоятельный вид терапии, так и вместе с другими лечебными средствами.

По мнению ряда авторов С.Р. Дидовец (1962), Е.П.Деменьтьев (2001), Ш.Ф. Каримов (2003) сообщает об использовании тканевых препаратов в сочетании с антибиотиками при лечении пневмонии и желудочно-кишечных заболеваний молодняка.

Тканевые препараты оказывают благотворное влияние и при инфекционных заболеваниях, облучении (С.Р. Мучник, 1962). При комплексном применении биологически-активных веществ и каждого из них в отдельности у выращиваемого молодняка повышается естественная резистентность, снижается заболеваемость, падеж (В.И. Сапего, Е.В. Берник, 2002),

Г.И. Исанин, Г.П. Садовская (1964) в 1962-63 годы на птице использовали тканевый препарат из селезенки, вводя его четырехкратно с интервалом в 40–45 дней. В итоге падеж птицы снизился с 12,1 до 8,2 %, частота регистрации анемии – с 7,1 до 2,3 %.

Биологически активные вещества дали положительный результат при лечении кератоконъюнктивитов, помутнения и язвы роговицы у лошадей, крупного рогатого скота, собак, кошек (В.А. Красноперов, И.П. Липовцев и др. (1964), эндометритов коров (А.И. Кузин, Г.В. Борисова и др., 2002), при заболеваниях телят (П. Константинов и др., 1972), собак и кроликов (В.П. Соловьева, 1962).

Основываясь на данных В.П. Филатова, М.А. Макаров (1957; 1959; 1972) лечебное действие тканевых препаратов объясняет влиянием биогенных стимуляторов на ферментативные процессы нервных и других клеток, усилением обмена веществ и повышением физиологических функций организма.

Тканевые препараты оказывают действие и на кору больших полушарий мозга и тем самым изменяют состояние лабильности центральной нервной системы.

В зависимости от исходного функционального состояния нервной системы, силы и продолжительности раздражения, вызываемого тканевыми препаратами, может происходить или повышение её, а, следовательно, повышение или же понижение реактивности. Н.Н. Даричева, В.А. Ермолаев (2000) объясняют лечебное действие тканевых препаратов активизацией нервной системы и их влиянием на ослабленные функции организма, что способствует более быстрому выздоровлению животного.

Итак, рассмотренные работы по применению тканевых препаратов в ветеринарии свидетельствуют о значительной эффективности этого приема. Действие тканевых препаратов проявляется в росте продуктивности животных, а также стимуляции защитных сил организма и повышении устойчивости к неблагоприятным условиям. Однако, по мнению Н.Г. Беленького (1963), К.Н. Чекурды, С.А. Векслера (1963), И.Б. Гладковой, Б.А. Гладкова (1971), М.В. Плахотина (1977) эти работы в какой-то мере противоречивы по своим конечным результатам.

Они отмечают, что тканевые препараты по Филатову трудно инъецируются, нередко наблюдается появление абсцессов на месте введения средств. Противопоказано применение тканевых препаратов при низком уровне кормления, истощении, при сердечно-сосудистых заболеваниях, ожогах в период острого проявления ожоговой болезни, тяжелых интоксикациях. В связи с этим перед стимуляцией больные животные подлежат тщательному ветеринарному обследованию.

Наконец, говоря о приемах стимуляции животных биологически-активными веществами, следует указать, что действие некоторых современных стимуляторов при определенных технологиях выращивания животных изучено ещё недостаточно. Требует дальнейшего изучения и обоснования дозы, способы введения препаратов у различных половозрастных групп животных и птицы.

Наиболее актуально применение биостимуляторов в промышленном птицеводстве, т. к. высокая концентрация птиц на относительно малых площадях, клеточное содержание и гиподинамия, увеличивающие влияние техногенных факторов на организм, приводит к снижению иммунобиологической реактивности и нарушению обмена веществ у птиц (М.С. Найденский, И.С. Шпиц и др., 1995; Н.В. Брендин, Н.В. Горбунова и др., 1997; А.Ф. Исмагилова, 1999; Л. Покровская, 2000; В.А. Кармолиев,2002; Ш.Ф. Каримов, 2003; Н.А. Травникова, 2004).

Важным также является разработка новых биостимуляторов, изыскание оптимальных доз и эффективных методов их введения для птиц различного возраста с целью повышения естественной резистентности ипродуктивности животных и птицы.

2. Природа и механизм действия биологических стимуляторов на организм животных и птиц

Птицы имеют ряд биологических особенностей. К их числу относятся быстрый рост, высокая плодовитость, физиологическая скороспелость, относительно высокая температура тела (40–42 °C, которая может падать на 2 °C ниже обычной в состоянии покоя), развитие эмбриона вне тела матери, своеобразное строение кожного покрова, органов пищеварения, иммунной системы и др. В связи с этим обменные процессы в организме птиц протекают более активно, чем у млекопитающих (Г.П. Мелехин, Н.Я. Гридин, 1977; A.S. King, Mclelland, 1984; В.Н. Агеев, И.А. Егоров, Т.М. Околелова и др., 1987; Е.А. Орлова, 2006; В.Г. Скопичев, Н.Н. Максимюк, Б.В. Шумилов, 2008).

В первые дни постэмбрионального периода онтогенеза у птицы происходит переход с липидного типа питания на углеводный (Ю. Косинцев, Э. Тимофеева, Е. Козлобаева, 2004). Адаптация цыплёнка к углеводистому питанию осуществляется за счёт имеющегося остаточного желтка, состоящего в основном из липопротеидов (С. Салгереев, Д. Смердинов, Д. Филлипова и др., 2007).

Желток для новорожденного цыплёнка – это источник легкодоступной энергии и белков, необходимых для роста и развития. Остаточного желтка хватает на поддержание организма в течение 1–4 дней после рождения (A. Ashworth, D.J. Millward,1986), но при этом не развиваются желудочно-кишечный тракт и иммунная система, а также не наращиваются мышечные ткани. Быстро проведённое первое кормление цыплят является “спусковым крючком” в их ускоренном развитии. Оно позволяет не только быстрее усвоить остаточный желток, но и оказывает благотворное влияние на развитие желудочно-кишечного тракта суточного цыплёнка и рост клеток мышечной ткани (Viera and Moran, 1999; Ravindran, 2003; К. Казабан, 2005).

Раннее начало кормления ускоряет рост и развитие цыплят.

Исследования, проведённые в ППЗ “Смена” показали, что каждый дополнительный грамм массы в первые 7 дней жизни цыплят обеспечивает увеличение её к концу откорма бройлеров (40–42 дня) на 7-10 г. Раннее правильное кормление цыплят, настраивает организм птицы на высокое усвоение питательных веществ в последующие периоды постэмбрионального периода, что необходимо для формирования у цыплят устойчивого иммунитета, нормального развития сердечно-сосудистой системы и костяка (В. Сидоренко, 1995; И. Егоров, Е. Логвинов, В. Столяренко, 2000; В.Л. Тучемский, С. Карбулов, С. Салгереев, 2004; И. Лебедева, Н. Верещак, А. Маслюк, 2006; В. Галкин, 2007; М.Н. Сирухи, 2008; Т. Кутовенко, 2008).

Порции корма, поступающие в желудочно-кишечный тракт в первый день жизни цыплёнка, активизируют рост крипт клеток слизистой оболочки, которые заменяют эмбриональные клетки. Только когда окончательно сформируется слизистая кишечных стенок, система пищеварения цыплёнка будет готова к нормальному перевариванию и всасыванию питательных веществ. Максимальное развитие ворсинок, глубины и густоты крипт слизистой, мышечной оболочки всех отделов тонкого кишечника по данным В. Крюкова, Е.Ю. Байковской (2002), Т.А. Пономарёвой (2004), наблюдается к 10–12 дню жизни.

Сразу после вывода цыплят их кишечник стерилен, затем в нём начинает развиваться микрофлора. В комбикорма для сельскохозяйственной птицы иногда включают живые культуры или споры полезных микроорганизмов – пробиотики.

A.D. Palic, N. Siyacki (1959), Н.Е. Касаткина (1979), Э.О. Оганов (1992), М. Paganin, P.G. Meneguz (1992); С.Н. Зегденизов, Е.Д. Чумакова (1993), Е.Р. Павлов (1999) установили, что наибольший интенсивный рост органов желудочно-кишечного тракта, опережающий увеличение массы тела у цыплят, наблюдается с 1 по 7 дни жизни.

Железистый, мышечный желудок, поджелудочная железа и тонкий кишечник птиц вначале растут быстрее других тканей, их относительный вес достигает максимума к 5–7 дню. Причём возрастает протеолитическая активность тканей этих органов, что тесно связано со способностью цыплёнка переваривать белки (И. Салеева, А. Шоль З. Петрина, 2008).

У растущих цыплят повышена потребность в аргинине, глицине, серине и пролине у (D. Sklan et al., 1988).

В первую неделю жизни масса поджелудочной железы и печени возрастает в 2–4 раза (В. Крюков, Е.Ю. Байковская, 2002). Становление функции печени заканчивается к 14 дню, поэтому для раннего возраста цыплят имеются физиологические ограничения по вводу в рацион жиров (2,5–3,0 %) из-за неспособности печени вырабатывать достаточно желчи для их омыления (А.В. Шоль, 2008).

В развитии печени птиц кросса Хайсекс браун Д.А. Косенковой (2006) были выделены критические фазы развития: на 1 сутки, 60-дневном и 120-дневном возрастах. Наивысший рост относительной массы печени при клеточном содержании приходился на 35-дневный возраст.

Активность мальтазы и сахаразы имеет место уже при выводе птицы, поэтому они способны расщеплять сахара в первые дни жизни (на 4–5 день). Переваривание жиров при рождении птицы посредственное (Е.Е. Макеева, 2000).

Активность протеаз достигает максимума только к 10–12 дню жизни. Установлено, что эмбрионы птицы способны абсорбировать аминокислоты.

У только что выведенных цыплят обнаруживаются трипсин, химотрипсин, карбоксипептидазы. В первые дни жизни содержание этих ферментов резко падает, так как их синтез в это время гораздо ниже потребностей необходимых для полного переваривания белков. Уровень активности трипсина и химотрипсина 5-6-дневных цыплят значительно ниже, чем у суточных, затем он стремительно возрастает и достигает максимума в возрасте 10-дней (Е.Ю. Байковская, 2002).

В первые дни жизни в крови цыплят выше процент молодых форм эритроцитов – ретикулоцитов (3–5 % от общего числа циркулирующих эритроцитов), с возрастом их количество снижается до 0,7–1% (Б.Ф. Бессарабов, С.А. Алексеева, Л.В. Клетикова, 2008).

Исследованиями Н.В. Донковой (2004, 2006), И.М. Карпуть (2000), установлено, что в раннем постнатальном периоде (с 3 по 5 день жизни) у цыплят наблюдается низкий уровень содержания в крови эритроцитов, гемоглобина, лейкоцитов, общего белка, лимфоцитов, иммуноглобулинов, что связано с повышенным расходованием защитных факторов, поступивших из яйца, под влиянием интенсивного антигенного воздействия в новых условиях жизни.

Е.Н. Шилова, С.В. Садчикова (2008) отмечали низкий уровень эритроцитов, лейкоцитов, В-лимфоцитов у суточных цыплят и повышение их уровня к 7-дневному возрасту.

В первые дни жизни цыплят в крови наблюдается высокая активность АсАТ и низкая активность АлАТ. Устойчивая активность АлАТ обнаруживается только после 30 дней выращивания птицы. (Н.И. Чернышев, И.Г. Панин, Н.И. Шумский, 2007). Завышенные показатели активности аминотрансфераз свидетельствуют о напряженном функциональном состоянии печени.

В первую неделю после вывода цыплята не обладают достаточным иммунитетом. Пониженная реактивность их организма в первые дни жизни выражается слабым проявлением неспецифических гуморальных факторов, недостаточной защитной силой кожно-перьевого покрова и слизистой оболочки желудочно-кишечного тракта, морфологической и функциональной незрелостью иммунных органов (Л.С. Колабская, 1982; А.Ю. Бакулин, 1994; Б.А. Гладков, 1990; Р.Л. Оуэн, 1996; Н. Донкова, 2006; С.М. Салгереев, 2008).

Развитие тимуса и фабрициевой бурсы (центральных органов иммунитета птиц) – основной фактор, определяющий иммунологическую реактивность организма птицы. Удаление одного из них сразу после вылупления цыпленка с последующим облучением позволило выявить различающиеся клеточные системы в периферической лимфоидной ткани селезенки и кишечника (Е.К. Олейник, 1982). В результате было установлено, что тимус контролирует реализацию клеточно– опосредованных иммунных реакций, а бурса – синтез антител.

Тимус суточных цыплят ещё не полностью сформирован т. к. полностью он формируется с наступлением половой зрелости (М.Е. Пилипенко, 1965; M.D. Kendall, 1980; Н.И. Женихова, 2006).

Абсолютная масса тимуса у суточного цыпленка равняется 150–200 мг. За первые 10 дней жизни относительная масса тимуса увеличивается в 5 раз (Я.С. Шнейберг, 1988).

Чем выше размер тимуса суточных цыплят, тем выше их жизнеспособность и потенциал к росту (Э.Э. Пенионжкевич, 1962; В.Ф. Вракин, 1984).

Нарушения функции тимуса в раннем постнатальном периоде приводят к ослаблению или отсутствию как клеточного, так и гуморального иммунитета (С.Ю. Зайцев, Ю.В. Конопатов, 2005).

Фабрициева бурса в момент вывода у цыплят ещё полностью не сформирована (Н.В. Садовников, Н.И. Женихова, М.В. Столбикова, 2008), имеет размеры около 5 мм в длину и вес около 0,05 г, а в 4-месячном возрасте – 3 см длины и около 3 г веса (И.А. Болотников, 1987). В постнатальном онтогенезе фабрициева сумка достигает максимальных размеров в период с 4,5 до 12 недель и после этого орган подвергается инволюции.

Как указывает С.Б. Селезнев (1996) у цыплят в первые дни жизни существуют устойчивые связи между тимусом и клоакальной сумкой. Удаление первичных органов в эмбриональном или раннем постэмбриональном периоде приводит к тяжелым нарушениям иммунологической реактивности.

Селезенка у птиц принимает активное участие в формировании иммунитета и поэтому определение морфологических критериев ее иммунодефицитного состояния имеет несомненное значение в общей оценке иммунной функции организма. В первые недели жизни относительная масса селезенки быстро увеличивается, а, начиная с 7-й недели жизни, темп роста замедляется и максимального размера селезенка достигает в 100-120-суточном возрасте.

Формирование лимфоидных узелков свидетельствующих о функциональной деятельности селезенки, происходит лишь к 15-дневному возрасту. Количество их нарастает до 3-месячного возраста, а затем число их с возрастом постепенно снижается. Это, по мнению Б.А. Гладкова (1988), объясняется тем, что у взрослой птицы система местного иммунитета становится более совершенной и поэтому больше антигенов задерживается вблизи места проникновения, не поступая в кровь.

По мере развития реактивность организма птиц постепенно усложняется и совершенствуется, что связано с развитием желез внутренней секреции, формированием определенного уровня обмена веществ, совершенствованием защитных приспособлений против инфекций, интоксикаций и т. д. Созревание иммунной системы птицы, в постэмбриональном развитии заканчивается в течение первой недели, после чего её можно рассматривать физиологически полноценной (Ю.В. Конопатов, Е.Е. Макеева, 2000).

Таким образом, в ранний постэмбриональный период онтогенеза птицы происходят активные процессы развития пищеварительной, ферментативной, иммунной и других систем организма. Необходим особый оптимальный подход к питанию в первые дни жизни цыплят, позволяющий стимулировать их развитие и обеспечить интенсивный рост в ходе всего продуктивного цикла.

При обычных условиях кормления и содержания без специальной стимуляции репродуктивная способность сельскохозяйственной птицы проявляется далеко не полностью приблизительно на одну треть пример тому домашние куры их продуктивность можно повысить со 100–120 яиц до 260–280 яиц при условии полноценного кормления (улучшение, рациона его сбалансированность, а также улучшение микроклимата). (С.Карапетян 1971).

Важнейшая биологическая особенность птицы проявление при гибридизации гетерозиса – усиленный рост и развитие. Гибридная птица обладает наиболее высокой продуктивностью и жизнестойкостью.

Как считают Г.П. Мелехин, Н.Я. Гридин, 1977; П.В. Макрушин, В.М.Лазарев, 1990; Н.Г. Фенченко, 1994, куры способны быстро формировать и закреплять условные рефлексы, а также тонко дифференцировать раздражители. Благодаря этим свойствам нервной системы домашняя птица быстро адаптируется к различным условиям, сохраняя при этом высокую жизнеспособность и продуктивность.

Следствие этого – внедрение метода прогрессивного выращивания молодняка и содержания кур в батарейных клетках, применение искусственно регулируемого температурного и светового режима в птицеводческих помещениях (В.М, Селянский, 1975; М.С. Найденский, 1982; В.М. Юрков, 1991).

У кур протекают очень быстро все обменные процессы, в частности белковый и витаминный обмен, поэтому они очень высоко оплачивают корм яичной и мясной продукцией. При обогащении рациона цыплят-бройлеров стимуляторами роста этот показатель еще больше повышается. Это огромный биологический резерв птицеводства и его надо использовать (А.Я. Аврутина, 1982; Б.С. Орлинский, 1984; В.П. Андрейчук, 1987; И.В.Петрухин, 1989; Р.Ф. Бессарабов, 1992; Ю.В. Конопатов, 1993; Т. Снытко, 1997; Т.А.Фаритов, 1996).

Индустриальные методы животноводства неизбежно усиливают действие на организм животного таких отрицательных факторов, как стресс, гиподинамия, понижение резистентности, дефицит природных биологически активных веществ (БАВ) в кормахи т. д. Снизить потери от указанных факторов и повысить продуктивность животных можно с помощью препаратов биогенных стимуляторов (В.П. Филатов 1953; В.М. Королев, 1964, 1972; H.A. Колченов, 1975; Д.М. Жидков 1975; В.П. Соловьева 1975; Е.М. Кожевников, 1980; А.Ф. Кузьмин, А.И. Власов, Е.Ф. Станишевский, 1983; И.А. Калашник 1986; В.К. Пестис, 1987; Т.В. Пак, 1999; Р.Т.Маннапова, 2000; А.Н. Криворотов, 2001).

Весьма перспективным путем профилактики и лечения болезней молодняка сельскохозяйственных животных и повышение иммунобиологической реактивности организма является использование биологически активных препаратов из природных средств и сырья животного и растительного происхождения (И.А. Калашник, 1962; И.А. Федько, 1964; И.М. Голосов, 1964; Х.Г. Гизатуллин, 1981; Р.Д. Бодиев, 2001).

Известно, что препараты из сырья животного происхождения (биостимуляторы) оказывают, прежде всего, общее действие на организм и затем на этом фоне происходит избирательное преимущественное влияние на их соответствующие органы и системы. Доминирующее положение в единой нейрогуморальной регуляции занимает нервная система. Она постоянно координирует процессы обмена веществ, интеграцию жизнедеятельности организма как единого целого и его связь с внешней средой. Между микро– и макроэлементами, а также другими биологически активными веществами в животном организме существует тесная взаимосвязь. Учитывая это свойство, многие биологически-активные вещества нашли применение в приготовлении лекарственных препаратов, применяемых для профилактики и терапии многих заболеваний животных и птицы (М.И. Савунова, 1975; И.В. Сидоров, 1976; Д.К. Червяков, 1977; Д.Ф. Осидзе, 1981; Н.И. Жаворонков, 1984; В.Д. Соколов, М.И. Рабинович, 1997; М.Д. Машковский, 2001).

Тканевые препараты способствуют усилению тканевого дыхания, что, в частности, подтверждается повышением активности таких ферментов, как глицерофосфодегидрогеназа, сукциндегидрогеназа, а также довольно быстрому окислению кетокислот и уменьшению концентрации углеродосодержащих продуктов в моче.

Также усиление активности глицерофосфатдегидрогеназы и сукциндегидрогеназы в таких органах, как печень, почки, тонком кишечнике и сердечной мышце, свидетельствует, что применяемые тканевые препараты являются довольно эффективными активаторами процессов дегидрирования (H.H. Ярошенко, 1964; И.В. Савицкий 1964; Р.Х. Кармолиев, 1999).

В целом, стимулирующее действие тканевых препаратов и биостимуляторов различно. Одни из них принимают непосредственное участие в обмене веществ, другие активируют ферментативные процессы, третьи являются специфическими раздражителями интерорецепторов. В малых дозах они способствуют образованию специфических пластических и энергетических веществ в организме, активируют ферментативные процессы, а также секреторную и гормональную деятельность, улучшают функциональную деятельность всей нервной системы, активизируют кроветворение, усиливают иммунобиологическую реактивность организма (В.В. Ковальский, 1962; H.H. Горн, 1965; Н.Ф. Кап, 1967; С.Р. Мучник, 1964; Б.С. Кубарский, 1971; A.A. Ивановский, 1998; В.А. Мулынин, 2001).

В действии тканевых препаратов обращает на себя тот факт, что при их применении существенно не изменяются физиологические процессы здорового организма, но повышается его устойчивость к неблагоприятным факторам. При заболеваниях животных биогенные стимуляторы способствуют восстановлению нормального состояния организма. В чем же заключается механизм стимулирующего действия тканевых препаратов, что обработанные ими животные в равных условиях с контрольными дают значительно выше приросты (Б.Я. Педера, 1964; Е.С. Шулюмова, 1962; Ю.М. Расстегаев, В.И. Шадрин,1973).