Текст книги "Ветеринарная анестезиология"

При подготовке к анестезии следует 12 – 24 – 48 ч соблюдать голодную диету, 8 – 12 ч не поить водой. Из-за опасности гипогликемии у новорожденных голодная диета не проводится. Под анестезией имеет место частичное сокращение желудка, что при открытой кардии может привести к регургитации. Накопление газов в рубце (как у других жвачных) отсутствует.

Для седации наиболее часто применяется кетамин с каким-либо α₂-агонистом в одном шприце, внутримышечно.

Дозировки: ксилавет (0,3 – 0,6 мг/кг) + кетамин (4 – 6 мг/кг) в/м. Длительность анестезии около 30 – 45 мин; медетомидин (0,03 – 0,04 мг/кг) + кeтамин (4 мг/кг) в/м. Длительность анестезии около 45 мин; ксилазин (0,1 – 0,2 мг/кг) + кетамин (4 мг/кг) + буторфанол (0,2 мг/кг). Длительность анестезии – около 30 мин.

Поддержание: при длительной анестезии с использованием изофлурана.

Интубация: интубировать лам очень тяжело. Существуют различные возможности:

– «вслепую» (в боковом положении);

– в грудном положении под контролем зрения;

– «катетер-стилет» (проводник) вводится под визуальным контролем и тубус продвигается.

Внимание! Правильное положение головы весьма важно, так как выступающие глаза могут быть легко поранены. Чтобы предотвратить высыхание, в глаза закладывают мазь.

Голова кладется так, чтобы рефлюкс из полости рта мог свободно стекать.

Регургитация более вероятна в левом боковом положении, чем в правом.

Глубина анестезии определяется по следующим параметрам:

– глазное яблоко в течение анестезии неподвижно и не вращается;

– рефлекс век верхнего века остается и сохраняется в течение хирургической стадии анестезии;

– роговичный рефлекс всегда должен быть в наличии.

Стадия пробуждения:

– животные, как только возможно, перемещаются в грудное положение;

– ламы часто остаются долго лежать в грудном положении и встают, как правило, спокойно;

– возможно введение антагонистов: атипамезола (0,3 – 0,5 мг/кг в/м) для α₂-агонистов или сармазенила для бензодиазепинов (0,05 мг/кг в/в, медленно).

Поскольку работа с приматами подразумевает общение с дикими и агрессивными животными (даже дрессированная обезьяна, всегда остается опасной для человека), как правило, перед анестезией удается провести только визуальный осмотр животного. Всегда необходимо помнить о том, что большинство приматов потенциально опасны для человека, как переносчики гепатитовВиСивируса герпеса второго типа, поэтому непосредственный осмотр и манипуляции должны проводиться в перчатках и только с животным, находящимся под анестезией.

Для успешного проведения анестезии необходимо от обслуживающего персонала собрать сведения о том, как и чем питалось животное, количество потребляемой им жидкости, наличие или отсутствие рвоты, диареи, одышки после физической нагрузки и кашля, об изменении в поведении животного. Подобные симптомы могут стать единственными признаками невыявленных заболеваний и определить риск проведения анестезии. У животных, для которых анестезия является плановой, по возможности, берут кровь для общего и биохимического анализа.

Подготовка к анестезии: голодная диета в течение 12 – 24 ч исключает вероятность рвоты или регургитации, воду убирают за 2 ч до анестезии. Животное, по возможности, переводится во внутренние помещения. Анестезия проводится в отсутствии других животных. Должны быть убраны все поилки, кормушки и другие приспособления, о которые животное может травмироваться. Если обездвиживание проводится в открытом вольере, необходимо учесть возможность падения животного. Вода из искусственных водоемов должна быть откачана.

Премедикация проводится путем внутримышечного введения большинства препаратов, так как пероральный прием зачастую или не возможен или не дает уверенности в том, что животное примет весь предложенный препарат полностью. А дополнительные инъекции зачастую настолько возбуждают животное, что повторные инъекции становятся невозможными, в условиях же дикой природы, как правило, у ветеринара есть только одна попытка для введения препаратов. Однако у небольших животных, которых можно зафиксировать руками или сачком, возможно применение фенотиазинов – ацепромазина в дозе 0,1 мг/кг за 30 мин до анестезии (рекомендуется для приматов Старого Света), или бензодиазепинов – диазепам в дозе 0,5 – 1 мг/кг (для приматов Нового Света и лемуров).

Кетамин-диазепам-анестезия

У полуобезьян и низших приматов для проведения несложных диагностических мероприятий (рентген, взятие крови, УЗИ) и для мелких хирургических вмешательств можно использовать комбинацию кетамина с бензодиазепинами (диазепамом).

Дозировка:

– низшие приматы – кетамин 10 мг/кг + диазепам 0,5 мг/кг в/м;

– полуобезьяны – кетамин 20 мг/кг + диазепам 0,5 мг/кг в/м.

Комбинация кетамина с α₂-агонистами

Кетамин/ксилавет (XylaVet)

Данная комбинация может применяться практически у всех видов приматов, от человекообразных до полуобезьян, для проведения средних хирургических вмешательств продолжительностью до 60 мин.

Использование ксилазина в сочетании с кетамином заметно снижает уровень возбуждения, мышечный тонус и спонтанные сокращения мышц, являющиеся следствием воздействия кетамина. Частота развития судорог уменьшается, хотя и не исчезает полностью.

Кроме того, даже небольшие дозы ксилавета существенно снижают количество вводимого кетамина. Основным недостатком использования комбинации кетамин + ксилавет является большой объем вводимой смеси, для самца гориллы он может составить до 30 мл.

Альтернативным вариантом может быть использование так называемой «Хеллабрунской смеси», когда сухая субстанция ксилавета растворяется 10 % кетамином (500 мг ксилавета+4млкетамина 10 %). В результате каждый миллилитр полученного раствора содержит 125 мг ксилавета и 100 мг кетамина. В результате даже для крупных животных требуются небольшие объемы полученной смеси.

Использование ксилавета как анестезирующего агента имеет ряд отрицательных сторон. В частности, он как и все α₂-агонисты вызывает брадикардию, снижение АД и минутного выброса. Высокие дозы ксилавета могут вызывать рвоту и респираторное угнетение. Поэтому проведение анестезии с применением комбинации кетамин + ксилавет должно иметь соответствующее обеспечение – пульсоксиметрия, интубация, ИВЛ.

Дозировка:

– человекообразные – кетамин 5 – 10 мг/кг + ксилавет 0,1 – 0,5 мг/кг в/м;

– низшие приматы – кетамин 5 – 15 мг/кг + ксилавет 0,5 – 2,0 мг/кг в/м;

– полуобезьяны – кетамин 15 – 20 мг/кг + ксилавет 1 – 3 мг/кг в/м.

Кетамин/медетомидин

Медетомидин (Domitor) – это новый препарат из группы α₂-агонистов, обладает более высоким сродством к рецепторам-мишеням, благодаря чему требует меньших объемов для введения и обладает более специфичными эффектами.

Применяемая комбинация обеспечивает превосходную релаксацию скелетной мускулатуры, ларингеальные и фарингеальные рефлексы при использовании этих анестетиков частично сохраняются, гиперсаливации нет. Введение в анестезию исключительно мягкое и плавное, составляет 15 – 20 мин. Выход из анестезии гладкий и постепенный.

Данная комбинация применяется у крупных человекообразных приматов.

Дозировка: медетомидин 0,05 мг/кг + кетамин 5 мг/кг.

Использование α₂-антагонистов:

Характерной особенностью α₂-антагонистов является их воздействие на сердечно-сосудистую и центральную нервную систему, поэтому необходимо проявлять осторожность при их использовании.

Теоретически доза антагонистов, вводимая в конкретный момент, должна коррелировать с количеством агонистов, сохранивших эффективность к этому времени. Для расчета необходимой дозы нужно знать не только когда и в какой дозе вводился агонист, но и какова скорость его элиминации для конкретного вида животных. К сожалению, такие данные отсутствуют, поэтому дозировки препаратов, обращающих анестезию у приматов, рассчитываются на основе практического опыта экспериментаторов и экстраполяции аналогичных исследований, проводимых на домашних животных. Принцип действия α₂-антагонистов заключается в блокировке центральных и периферических α₂ и α₁-адренорецепторов.

Иохимбин представляет собой одно из соединений группы индольных алкалоидов, обладающих свойствами блокировки α₂-адренорецепторов. Иохимбин имеет низкую избирательность и вызывает возбуждение при передозировках.

Дозы составляют 0,15 мг/кг для крупных видов и до 0,5 мг/кг для мелких видов. Время реверсии при внутримышечном введении составляет 10 мин.

Атипамезол является другим производным имидазолина. Это высокоспецифичный антагонист α₂-адренорецепторов со значительно большей специфичностью, чем иохимбин.

Дозы составляют 2,5 – 3 дозы введенного медетомидина или ксилавета и приводят к мягкому пробуждению животного в течение 10 – 20 мин.

Золетил (тилетамин + золазепам). Использование тилетамина как моносредства для анестезии вызывает судороги и не обеспечивает достаточной мышечной релаксации. Его применение в комбинации с бензодиазепином гидрохлоридом золазепама позволяет значительно углубить анестезию, степень которой может варьировать от медикаментозной иммобилизации до диссоциативной анестезии. Лиофилизированная смесь этих двух компонентов в пропорции1:1 поступает в Россию под названием «Золетил» (Zoletil, Virbac).

При внутримышечном введении золетила иммобилизация наступает очень быстро, и начальные эффекты начинают проявляться уже через 2 – 3 мин после введения, причем период индукции не связан с дозой препарата. Возможность достаточно быстрой иммобилизации в сочетании с высокой растворимостью препарата и, следовательно, потребностью в весьма малых объемах дает основание считать эту комбинацию наиболее подходящей для иммобилизации свободноживущих животных. Смесь обладает достаточно большой широтой в дозировках и позволяет проводить как небольшие диагностические мероприятия, так и достаточно обширные хирургические вмешательства. При ее использовании поддерживается нормальная деятельность сердечно-сосудистой системы, а угнетение дыхания очень незначительно и не представляет серьезной проблемы. Специфического антидота к препарату не имеется.

Дозировка:

– человекообразные приматы – 2 – 3 мг/кг;

– низшие приматы – 3 – 10 мг/кг;

– полуобезьяны – 3 – 8 мг/кг.

При необходимости поддерживать анестезию дольше, чем позволяют максимально допустимые в отношении безопасности животных дозы анестетиков, наилучшим методом является ингаляционная анестезия через эндотрахеальную трубку. Использование ингаляционной анестезии укорачивает время восстановления по сравнению с тем, которое могло бы потребоваться при парентеральном введении добавочных доз анестетиков.

Перед проведением интубации, животному вводят роторасширитель, у большинства крупных и средних приматов в качестве простейшего приспособления подходит отрезок толстостенной пластиковой трубки соответствующей длины. Трубку помещают с одной стороны между верхними и нижними клыками, так чтобы их коронки находились в полости трубки. Как правило, интубация осуществляется на вдохе при дорсальном положении животного и для нее не требуется использования препаратов для местной анестезии гортани. Производится она при непосредственном осмотре с помощью ларингоскопа с клинком «макинтош». Можно использовать эндотрахеальные трубки с манжетами различных конструкций, однако надо учитывать, что у приматов короткая трахея и вполне вероятно травмировать бронх первого порядка, поэтому после проведения интубации необходимо провести аускультацию для контроля положения трубки. У малых приматов, вес которых не превышает 1,5 кг, используют трубки типа «Cola», у полуобезьян и игрунковых используют внутривенные катетеры размером 14 – 16G, однако интубировать мелких приматов не всегда целесообразно, так как можно вызвать механическую закупорку трахеи, при использовании ингаляционной анестезии для таких животных удобней и безопасней использовать маску.

В качестве анестетиков используются:

– фторотан (галотан) в концентрации 3 – 4 %;

– изофлуран в концентрации 3 – 5 % с подачей кислорода 2 – 3 л/мин.

Как и у других животных, общая анестезия птиц может осуществляться инъекционным или ингаляционным методами.

Противопоказаниями к анестезии пернатых являются: подкожное ожирение, дистрофия печени, другие патологии печени или сердца, дегидратация, шок, анемия, диспноэ, а также воспаление зоба. Такие пациенты нуждаются в дополнительном исследовании для уточнения их состояния и в длительной предоперационной подготовке.

Ингаляционная анестезия птиц по многим параметрам предпочтительнее инъекционной. Ею можно управлять в зависимости от эффекта, она имеет большую терапевтическую широту, обеспечивает быстрое введение пациента в сон и раннее пробуждение. К преимуществам можно отнести и то, что продолжительность анестезии можно регулировать в зависимости от специфики операции, а также то, что эффект может быть мгновенно прекращен (в особенности это касается изофлурана). Изофлуран – идеальный анестетик для птиц, поскольку он имеет высокий терапевтический индекс, быстро вводится и выводится из крови, индуцирует минимальные физиологические изменения, обеспечивает адекватное обездвиживание для большинства процедур, безопасен для пациентов в критическом состоянии, мало токсичен.

Инъекционная анестезия птиц не так удобна, как ингаляционная. Большинство распространенных препаратов медленно выводятся из организма, и выход пациента из анестезии продолжителен, так как препараты тотально вовлекаются в метаболические пути. Это создает излишний стресс, продлевает период гипотермии и усиливает отклонения от нормального физиологического статуса. В ряде случаев цель анестезии не достигается из-за сокращения времени между введением в нее и пробуждением, так как инъекционные препараты не всегда обеспечивают достаточную продолжительность хирургической стадии анестезии. Недостатком использования парентеральных анестетиков является и то, что период выхода может быть намного длиннее, чем непосредственная продолжительность анестезии в ходе вмешательства.

В основном используют комбинацию кетамина и ксилавета, реже применяется кетамин и диазепам. При последовательном введении сначала диазепама в дозах 0,5 – 1,0 мг/кг, а через 10 – 15 мин кетамина (5 – 20 мг/кг) внутримышечно обеспечивается минимальный риск судорожных реакций при достаточно глубокой анестезии. Барбитураты в ветеринарной медицине птиц не рекомендуются вследствие низкого уровня их безопасности, длительной реверсии и строго внутривенного способа введения для предотвращения периваскулярных повреждений и обеспечения соответствующего уровня анестезии.

Успех любого анестезиологического пособия у пернатых в значительной степени зависит от их адекватной предоперационной подготовки (нормальная упитанность, компенсация дегидратации), мониторинга в ходе вмешательства (исключение потерь тепла) и, в особенности, от тщательного послеоперационного ухода.

При проведении общей анестезии птиц следует соблюдать следующие правила:

1. При любом виде анестезии необходимо обеспечить птицу кислородом; желательно всегда интубировать пациента, для предотвращения аспирации пищевых масс необходимо очищать зоб и тампонировать пищевод марлевым тампоном.

2. Лучше иметь чрезмерный поток кислорода, чем недостаточный.

3. Желательно располагать птицу в латеральном или вентральном положении.

4. Необходимо следить за частотой дыхательных движений птицы, стараться не допускать снижения респираторного ритма, по возможности поддерживать анестезию на самом легком уровне.

5. Обязательно нужно обеспечить птицу дополнительным теплом, для этого можно использовать водяные подушки с горячей водой или электронагревательные коврики, при подготовке операционного поля желательно как можно меньше применять алкогольсодержащие растворы; операционный стол должен быть сухим. Желательно подавать теплые газовые смеси в дыхательную систему птицы, стараться избегать гипервентиляции.

6. При работе с мелкими пациентами необходимо иметь под рукой шприц с присоединенным к нему катетером, для того чтобы отсасывать слизь из эндотрахеальной трубки.

7. Желательно избегать применения стандартных антихолинергических препаратов при проведении анестезии птиц.

8. Не рекомендуется слишком сильно фиксировать крылья, чтобы не мешать дыхательным движениям грудной клетки.

9. Если анестезия продолжается более 20 мин, необходимо проводить адекватную регидратационную терапию: 0,1 мл в/м раствора Рингера каждые 10 мин для птиц массой 30 – 60 г или 1 мл/кг/ч для крупных птиц. Это особенно полезно при применении препаратов, экскретирующихся через почки. При работе с препаратами, метаболизирующимися в печени, желательно добавить в раствор Рингера глюкозу. Лучше проводить инфузию внутрикостно или внутривенно.

10. Соблюдать соответствующую голодную диету.

У пернатых, по сравнению с млекопитающими, есть несколько особенностей дыхательной системы, которые необходимо учитывать при проведении анестезии.

Трахея птиц состоит из замкнутых хрящевых колец, и анестезиолог должен принимать во внимание существование огромного разнообразия анатомических особенностей в зависимости от вида птицы. Например, самцы многих водоплавающих птиц имеют пузыревидное расширение трахеи при входе в грудную клетку. У некоторых пингвинов трахея двойная. У журавлей развит комплекс трахеальных петель, располагающихся в грудной кости. Так как трахея состоит из замкнутых хрящевых колец, она неспособна растягиваться, поэтому при применении эндотрахеальных трубок с манжетами можно повредить слизистую трахеи, при этом трахеит развивается, как правило, через 5 – 7 дней после интубации. Фиброзный налет на внутренней стенке трахеи может привести к диспноэ, это особенно опасно для мелких и средних птиц. По этой причине трубки с манжетой для птиц обычно не применяются.

Главное отличие заключается в том, что птицы не имеют дыхательных альвеол. Вместо них у птиц воздушные капилляры, которые выполняют функции газообмена. Птицы также не имеют диафрагмы, и акт вдоха полностью зависит от движений грудины, коракоида и ребер. Вообще емкость собственно легких относительно мала по сравнению с эквивалентными по размеру млекопитающими, хотя по всем параметрам система воздушных мешков имеет больший дыхательный объем.

Так как у птиц отсутствуют альвеолы, то соответственно легкие не способны расширяться. Газообмен осуществляется в воздухоносных капиллярах, пронизанных кровеносными сосудами. Самый крупный размер капилляра на треть меньше диаметра самой мелкой альвеолы млекопитающих. Маленький диаметр неспадающихся капилляров создает большое давление градиента газов, способствующее эффективному газообмену. Система газообмена у птиц в 10 раз эффективней таковой у млекопитающих сходных размеров. Кровообращение в легких птиц перекрестное, т. е. газообмен происходит и на вдохе и на выдохе. Что также повышает эффективность газообмена.

Птицы очень чувствительны к концентрации СО₂ в крови, при недостатке углекислоты может развиться острое апноэ. Минимальный уровень СО₂ в крови, который необходим для стимуляции дыхания, у птиц составляет 25 мм рт. ст.

Особенности анатомии и гистологии респираторной системы птиц таковы, что даже у здоровой птицы во время анестезии в дорсальном положении может наблюдаться недостаточная оксигенация. Адекватная вентиляция затруднена у некоторых птиц, имеющих большую массу грудных мышц (курообразные, гусеобразные). Интубация и применение искусственной вентиляции настоятельно рекомендуется при проведении анестезии таких птиц.

У птиц имеется 9 воздушных мешков: 4 парных и один непарный. В зависимости от вида птицы воздушные мешки могут иметь дивертикулы, проникающие в шейные и грудные позвонки, в ребра, грудину, плечевые и тазовые кости. В воздушных мешках не происходит газообмена, так как их стенки практически не содержат кровеносных сосудов, они обеспечивают двустороннее движение воздуха через паренхиму легких.

Система воздушных мешков имеет большой объем «мертвого пространства» (у цыплят 34 % от общего объема). Благодаря двустороннему движению газов в легких птиц, сначала примерно 50 % газа на вдохе попадает в задние воздушные мешки, не участвуя в газообмене, на выдохе газ, пройдя через паренхиму легких, попадает в передние воздушные мешки. Оставшиеся 50 % газов на вдохе проходят через паренхиму легких в том же направлении, что и не участвующая в газообмене часть воздуха. Такая анатомия и физиология создают эффект сети, делая газообмен более быстрым и эффективным, чем у млекопитающих. Если при ингаляционной анестезии на этапе введения подать в респираторную систему птицы слишком большую концентрацию анестетика, развивается апноэ, при искусственной вентиляции в паренхиме легких продолжается абсорбция газов, оставшихся в задних воздушных мешках. Легко испаряющиеся анестетики могут очень быстро достичь опасной концентрации в крови.

Другой физиологический аспект анатомического строения легких заключается в том, что хеморецепторы, отвечающие за парциальное давление СО₂ в плазме крови, имеют большее значение, чем механорецепторы, регистрирующие изменение механического давления в капиллярах легких. Парциальное давление углекислого газа в легких у кур в норме на 30 % меньше такового в легких млекопитающих аналогичных размеров, это достигается за счет более эффективного газообмена. Поэтому птицы более чувствительны к гиперкапнии.

Во время анестезии птиц важно поддерживать большую скорость течения кислорода через респираторную систему. Она должна быть как минимум в три раза большей, чем нормальный минутный объем дыхания. Нормальный минутный объем по M. R. Fedde (1992):

– для домашней курицы весом 2,5 кг – 770 мл/мин;

– для гоночного голубя весом 300 г – 250 мл/мин;

– для ткачика весом 30 г – 25 мл/мин.

При использовании фторотана РаСО₂ постепенно повышается со временем даже у птицы с нормальным респираторным ритмом. При депрессии дыхания РаСО₂ поднимается намного быстрее (с 18 – 27 мм рт. ст. до 50 – 75 мм рт. ст. за 10 мин). При увеличении РаСО₂ до 80 мм рт. ст. птица погибает.

Эффект гипоксии варьирует у различных групп птиц. В любом случае у птиц потребление кислорода на порядок больше, чем у млекопитающих аналогичного размера. Птицы, обладающие способностью к быстрому полету, и ныряющие птицы лучше переносят условия гипоксии. Так, пингвины, которые при охоте способны погружаться под воду на длительный срок, лучше переносят гипоксию, чем пингвины Адели, которые не погружаются под воду на столь длительные периоды.

Многие препараты, используемые для общей анестезии птиц, являются депрессантами респираторной деятельности. Все вышеперечисленное делает поддержание адекватного респираторного ритма и высокого уровня оксигенации очень важным при любой схеме анестезии. Если это не принимать во внимание, то РаСО₂ очень быстро поднимается, без каких-либо угрожающих признаков. Даже при большой скорости потока кислорода удаление углекислого газа может быть недостаточным. При падении частоты дыхательных движений последствия могут стать необратимыми. Быстро развиваются условия респираторного ацидоза, угнетается миокард и падает кровяное давление. Повышение РаСО₂ предрасполагает к фибрилляции предсердий и желудочков и к остановке сердца.

Подготовка к анестезии

1. Регидратационная терапия.

Инъекционная терапия – важный аспект поддержания стабильности состояния пациента. Многие больные птицы, имеющие показания к операции, отказываются от еды и воды в течение предыдущих дней, часто на довольно длительный срок. При высоком уровне метаболизма у птиц, у них быстро развивается дегидратация. Заблаговременная коррекция дегидратации особенно важна для поддержания гомеостаза пациента во время анестезии.

При продолжительной анестезии птица может терять большое количество жидкости из-за большой внутренней площади воздушных мешков. Если птица уже была обезвожена, такая потеря жидкости может быть опасной, привести к критическому снижению циркулирующего объема крови, сокращению сердечного толчка, уменьшению тканевой перфузии и к анаэробному дыханию в тканях. Все это ведет к снижению рН крови и развитию метаболического ацидоза. Кроме всего прочего многие анестетики сами приводят к снижению кровяного давления.

Введение физиологических растворов пациентам с выраженной дегидратацией производят внутривенно или внутрикостно. Оральное или подкожное введение не всегда эффективно для восстановления или поддержания циркулирующего объема жидкости.

Внутрикостная канюля – прекрасный путь обеспечения пациента жидкостью во время хирургических процедур. По сравнению с катетеризацией периферических сосудов внутрикостная канюля более легка в обслуживании. Внутрикостная канюля, установленная в тибиотарзальную кость, может также использоваться пациентам в критических состояниях для регидратации, переливания крови или введения лекарств.

Для регидратации предпочтительнее использовать Рингера-лактат. Этот сбалансированный по электролитному составу раствор более соответствует физиологии птиц, чем растворы глюкозы. Пятипроцентный раствор декстрозы не подходит для регидратации, потому что для метаболизма декстрозы требуется много свободной воды. Во избежание гипотермии жидкие препараты перед введением их птице, находящейся в анестезии, должны быть подогреты до 36 °C.

Жидкости вводят медленно, для предупреждения передозировки объема. Максимальная скорость введения жидкости здоровой птице – 90 мл/кг/ч. Для какаду максимальная скорость составляет 9 мл/ч или 0,15 мл/мин, однако большинство пернатых пациентов не могут сохранять толерантность к такой скорости введения жидкостей.

Уровень электролитов и кислотно-щелочного баланса должен всегда приниматься во внимание у птиц, готовящихся к анестезии. Если невозможно определение существующего дефицита бикарбонатов и пациент обезвожен или критически болен, вводят по 1 мэкв/кг бикарбоната натрия с 15 – 30-минутными интервалами, при необходимости – максимально до 4 мэкв.

2. Голодание.

Рекомендации относительно голодания птиц перед анестезией варьируют от отрицания необходимости голодания до голодной диеты более 10 ч. Для хищных птиц рекомендуется голодание в течение 6 – 12 ч, а для крупных хищных – в течение 24 ч перед проведением анестезии.

Птицу содержат без еды так долго, как это необходимо для очищения кишечника. Птиц массой более 1 кг желательно выдержать на голодной диете 12 ч, массой от 300 г до 1 кг не кормить 6 ч, до 300 г – 3 – 4 ч, птиц массой менее 100 г не рекомендуется выдерживать на голодной диете.

Если зоб наполнен, то его необходимо очистить промыванием или мануально. Затем пищевод можно затампонировать марлей. Голова и шея укладываются с наклоном вверх, для уменьшения риска пассивной регургитации. Во время анестезии трахею желательно интубировать с помощью подходящей по размеру трубки.

3. Премедикация.

Стандартное использование атропина для премедикации не применимо для птиц, так как этот препарат увеличивает вязкость респираторных секретов, замедляет перистальтику и приводит к тахикардии. Сгущение респираторных секретов при маленьком диаметре эндотрахеальной трубки может привести к ее обтурации. Дополнительное учащение пульса нежелательно для пациента, и без того имеющего естественную тахикардию. Гликопирролат не вызывает нежелательных кардиологических эффектов, но также способствует сгущению респираторного секрета. Поэтому эти препараты используют только для специфической терапии при брадикардии. Рекомендуемая доза атропина сульфата для птиц – 0,2 мг/кг внутримышечно.

Для премедикации рекомендуется применять карпрофен 10 мг/кг или буторфанол 4 мг/кг за 5 мин до введения основной анестезирующей смеси. Это обеспечивает лучшую аналгезию и плавную индукцию анестезии

4. Подготовка к анестезии птиц с сопутствующей патологией.

Чаще всего анестезию птиц осложняют различные гепатопатии. Гепатит диагностируют при выявлении в крови низкого уровня протеина, увеличении или снижении концентрации желчных кислот и уровня тканевых ферментов, при рентгенографическом обнаружении гепатомегалии или уменьшении массы печени. Дисфункции печени уменьшают способность птицы к биотрансформации анестетиков и могут быть также ассоциированы с коагулопатией. Применение для этих пациентов каких-либо препаратов, которые метаболизируются ферментами печени (большинство инъекционных анестетиков, галотан, метоксифлуран), противопоказано. Перед применением анестезии желательно провести гепатопротективную терапию. Если анестезия не может быть отложена до адекватной стабилизации, то используют изофлуран и назначают инъекции аналогов витамина К для нормализации свертываемости крови.

Ожирение обычно для птиц, содержащихся в неволе. Отложения избытка жиров затрудняют дыхание. Респираторное усилие негативно сказывается в дальнейшем, когда птица наркотизирована и ей придано положение тела для хирургических процедур. Перед общей анестезией рекомендуются изменения диеты и коррекция метаболических нарушений.

При желточном перитоните, особенно у мелких видов (кареллы, неразлучники, волнистые попугайчики), часто возникает необходимость в хирургическом вмешательстве. Эти пациенты требуют тщательной стабилизации состояния перед анестезией. Процесс стабилизации затягивается иногда на недели, и в некоторых случаях хирургическое вмешательство может оказаться ненужным. Назначенные перед анестезией абдоминальная пункция и диуретики уменьшают объем жидкости в брюшной полости и улучшают способность пациента к дыханию.

Таких пациентов фиксируют в вертикальном положении, предупреждающем попадание абдоминальной жидкости и осколков скорлупы через разрывы в воздушных мешках в легкие. Операционный стол необходимо наклонить так, чтобы голова пациента находилась вверху.

При обычных процедурах с ожиревшими птицами или при скоплении абдоминальной жидкости необходима правильная интубация для обеспечения дыхания птицы. Мягкий режим перемежающейся ИВЛ с положительным давлением (IPPV) помогает поддерживать адекватный уровень оксигенации. При проведении ИВЛ обращают основное внимание на то, что легкие птицы минимально растяжимы, и давление в воздушных мешках поддерживают не свыше 15 мм рт. ст. для предупреждения разрыва воздушных капилляров.