Текст книги "Медицинская паразитология с энтомологией"

Муха цеце (глоссина) – двукрылое насекомое семейства Glossinidae. Все виды мухи цеце питаются кровью человека и животных. Многие из них являются переносчиками трипаносомозов человека и животных.

Муха цеце распространена на Африканском континенте южнее Сахары (от 14° с. ш. до 20° ю. ш.). Выделяют три экологические группы видов, связанных с определенными растительными ассоциациями.

Мухи первой группы (Glossina palpalis, G. tachmoides и др.) – обитатели галерейных лесов и зарослей кустарника по берегам рек и озер Западной и Центральной Африки; питаются в основном на рептилиях, нападают на человека.

Мухи цеце второй группы (G. morsitans, G. pallidipes, G. swynnertoni и др.) обитают в зоне саванн и саванных лесов Восточной и Южной Африки; питаются на диких и домашних копытных, нападают и на человека.

Мухи цеце третьей группы (G. fusca, G. brevipalpis и др.) встречаются в глубине тропических лесов, предпочитают места с высокой влажностью и умеренными температурами; из этой группы только G. brevipalpis нападает на человека.

Мухи цеце (рис. 66) – довольно крупные насекомые (длина тела от 9 до 14 мм). Ротовой аппарат приспособлен для прокалывания кожи. Они являются облигатными гематофагами, кровь пьют и самки, и самцы. Питаются часто. Количество поглощаемой крови колеблется от 65 до 156 мг. Мухи нападают на движущуюся добычу, обычно на идущих к водопою животных.

Мухи цеце живородящие, самка рождает по одной личинке, уже готовой к окукливанию (за жизненный цикл – по 12 личинок). Личинки зарываются в почву на глубину 3–5 см и через 4–5 ч окукливаются. Развитие заканчивается через 3–4 недели. Продолжительность жизни взрослых мух – 3–6 мес.

Рис. 66. Муха цеце

В начале XX в. было установлено, что мухи цеце являются переносчиками сонной болезни – смертельно опасного для человека заболевания. Они передают также трипаносомоз домашних животных – нагану (возбудитель Trypanosoma brucei), в связи с чем в районах с их высокой численностью скотоводство крайне затруднено.

Для уничтожения мух цеце проводят обработку района их массового размножения. Наиболее эффективны диэлдрин, эмульсия ДДТ и эндосульфан.

Очень перспективны биологические методы борьбы, в частности применение лучевой стерилизации самцов.

В целях профилактики уничтожают растительность вокруг поселков, по беретам водоемов в местах забора воды и на переходах.

Мерой индивидуальной защиты от укусов является применение репеллентов и защитная одежда из белой плотной хлопчатобумажной ткани с сеткой для лица.

Методы сбора, учета численности членистоногих и подготовки их к лабораторным исследованиям

Оценивая эпизоотическое состояние природных очагов зооантропонозных инвазий, необходимо иметь информацию об уровне и динамике численности членистоногих, среди которых многие виды являются переносчиками эпидемических болезней. При этом меняющуюся во времени и пространстве численность паразитов вычисляют в процессе эпизоотологического обследования природно-очаговых территорий. Его комплексно проводят специалисты из отдела особо опасных инфекций и энтомолог (паразитолог) эпидемиологического отдела Областных центров гигиены, эпидемиологии и общественного здоровья (ОЦГЭ и 03). При этом энтомологическая работа в природных очагах включает:

♦ сбор и доставку в лабораторию переносчиков возбудителей природно-очаговых инфекций;

♦ наблюдение за уровнем и динамикой численности паразитов;

♦ изучение видового состава переносчиков;

♦ изучение экологии переносчиков инфекций и факторов, влияющих на их численность;

♦ подготовку паразитических членистоногих к лабораторному исследованию;

♦ составление обзоров и прогнозов численности переносчиков.

Энтомологическая работа делится на два этапа – полевой и лабораторный.

Полевой этап включает сбор переносчиков с мест их обитания – нор и гнезд млекопитающих и птиц, поверхности почвы, растительности, шерсти диких, домашних и сельскохозяйственных животных. Сюда же относится обследование жилищ человека на зараженность эктопаразитами и доставка материала в лабораторию. В системе профилактических мероприятий важное место занимает полевая и поселковая дезинсекция.

Лабораторный этап предполагает очес животных и сбор с них эктопаразитов; выборку эктопаразитов из гнезд, клеевых листов и других ловчих приспособлений; подготовку эктопаразитов к лабораторному исследованию. Важным разделом является идентификация видовой принадлежности паразитов.

Вся энтомологическая работа осуществляется в соответствии с действующими нормативными документами.

Работы по сбору кровососущих членистоногих в поле и доставку их в лабораторию выполняет зоологическая группа под непосредственным руководством зоолога, при этом энтомолог (паразитолог) принимает личное участие в проведении учетных работ.

В лаборатории разборку материала и подготовку его к исследованию проводит энтомолог.

Видовую принадлежность эктопаразитов определяет паразитолог и врач-бактериолог.

Основные единицы учета численности эктопаразитов. Под численностью понимают общее число особей, составляющих популяцию. Так как определение численности всей популяции паразита труднодостижимо, то используют показатели численности, характеризующие количество особей на один объект-хозяин, один вход норы млекопитающего, гнездо птицы, микробиотоп грызуна, жилое строение (дом), 1 га природного биотопа, площадь 100 м², поросшую растительностью, или 1 м² пола и пр.

Работники, проводящие сбор эктопаразитов в полевых условиях, должны быть обеспечены защитной одеждой (комбинезоном), а при необходимости вакцинированы.

Методы сбора эктопаразитов в местах их обитания, а также орудия лова должны быть стандартными.

Переносчиков собирают с крупных диких, домашних и сельскохозяйственных животных, отлавливают в природных биотопах и в жилье человека. Осмотру на наличие эктопаразитов подлежат также найденные трупы млекопитающих и птиц.

Сбор эктопаразитов с мелких млекопитающих и птиц производят различными способами: давилками Геро, живоловками, капканами, петлями, отстрелом, в ловчие канавки и т. п. Обязательно подбирают встречающиеся в поле трупы животных.

В зависимости от целей сбора мелких животных укладывают в мешочки по одному или небольшими группами по видам, с учетом места добычи, стации. Мешочки должны превышать размер животного в 2–3 раза. Их шьют из плотной белой ткани. На расстоянии 4–5 см от верха пришивают завязку, мешочки используют швом наружу. После помещения животного в мешочек его края дважды подворачивают, складывают гармошкой и туго завязывают. Мешочки с животными с одного места добычи можно объединять в одну связку. Под тесемку закладывают этикетку с указанием даты, точного адреса, стации, вида и количества животных, фамилии сборщика. Транспортируют мешочки с животными в металлических отсадниках или больших клеенчатых мешках.

В лаборатории работу с доставленным материалом проводят в заразном отделении или специальном боксе. Мешочек с животным помещают в эмалированный таз или кювету, развязывают тесемки и собирают эктопаразитов с внутренней поверхности, постепенно выворачивая мешочек.

Тушку сбрасывают в таз, мешочек осматривают на наличие эктопаразитов, а затем свертывают лицевой стороной наружу и погружают в ведро с водой.

Очес млекопитающих и птиц проводят частым гребнем, кисточкой, пинцетом или зубной щеткой против шерсти (перьев). Особое внимание следует обращать на места концентрации эктопаразитов.

На мелких млекопитающих блохи, клещи (иксодовые, гама-зовые, аргасовые) чаще встречаются вокруг основания хвоста, в подмышечных впадинах, на шее.

Личинки клещей-краснотелок, кроме того, скапливаются на наружной и внутренней поверхностях ушных раковин.

У птиц иксодовые, аргасовые, некоторые гамазовые клещи обычно прикрепляются на веках, вокруг ушных отверстий, под крыльями, а краснотелковые клещи локализуются в нижней части тела, реже на голове. Птиц перед осмотром, как правило, ощипывают.

Одновременно с очесом эктопаразитов сортируют по группам. Блох из таза выбирают мягким пинцетом, специально изготовленным из гибкой стальной ленты, или аспиратором.

Иксодовых клещей можно собирать глазным, анатомическим, мягким пинцетом или тонкой кисточкой. Этих кровососущих помещают в сухие пробирки и закрывают ватно-марлевыми или корковыми пробками.

Вшей и гамазовых клещей собирают препаровальной иглой, мягкой кисточкой, смоченной в воде или спирте, и, чтобы избежать расползания, переносят в пробирки с водой или 70°-ным спиртом (для коллекционирования).

Личинок краснотелковых клещей осторожно соскабливают пинцетом или вырезают участки кожи с паразитами.

Для сбора блох с собак, кошек, ежей и прочих животных их шерсть можно слегка припудрить инсектицидом (хорошо применять пиретроиды – относительно безвредные для теплокровных животных препараты), затем завернуть животное на несколько минут в ткань или посадить в мешочек, оставив снаружи голову. Блохи остаются на ткани, после чего их собирают.

Другим способом является мытье кошек, собак теплой водой с хозяйственным мылом или специальным дезраствором.

Для сбора блох с убитых хищных млекопитающих и других крупных животных их можно подвесить над тазом с водой, куда будут падать покидающие труп эктопаразиты. Можно также воспользоваться обработкой шерсти животных инсектицидами. При работе с высоко прыгающими блохами используют посуду с высокими краями (баки, большие кастрюли).

Сбор эктопаразитов из нор грызунов для лабораторного исследования предпринимают в периоды, когда в верхних частях ходов нор (первом колене) находится максимальное количество насекомых, что характерно для весенне-летнего и осеннего сезонов.

Обследование нор в жаркий период года лучше проводить утром и вечером, в прохладный – в середине дня.

Метод применим в поселениях грызунов, чьи блохи обладают выраженной миграционной активностью. Из входов нор также добывают иксодовых клещей. Гамазовые клещи, как правило, встречаются редко. Кроме того, в субстрате ходов нор могут быть найдены все стадии развития аргасовых клещей.

Эктопаразитов из ходов нор добывают с помощью различных приспособлений: лент, тампонов, выгребалок.

Сбор членистоногих из ходов нор лентами всех типов проводят следующим образом. Перед входом в нору помещают салфетку или, лучше, круг – обтянутый фланелевой тканью обруч (диаметром около 50 см) с небольшой ручкой (до 15 см). Ленту-шланг вводят в первое колено норы, шевелят там несколько секунд, а затем извлекают ее из норы, осматривают, поместив на круг (или салфетку), и мягким пинцетом собирают блох и клещей.

При сборах для лабораторного исследования ленту вводят в ход норы несколько раз.

Для учетных работ блох из первого колена норы выбирают полностью, т. е. до тех пор, пока эктопаразиты перестанут попадать на ленту.

В местностях с песчаными почвами эктопаразитов из наклонных нор добывают выгребанием субстрата, который извлекают из норы к ее устью (скребком-выгребалкой или особым черпаком, похожим на узкую столовую ложку) в вырытую перед норой ямку (тарелку, миску). Собирают эктопаразитов пинцетом, аспиратором или укороченной бактериологической пробиркой.

Для выбора из субстрата различных стадий аргасовых клещей используют набор сит с убывающей величиной ячеек (не менее 2 мм) либо просматривают субстрат на светлой клеенке или в эмалированной кювете. Собирают клещей мягким пинцетом или кисточкой.

Сбор эктопаразитов из гнезд мелких млекопитающих и птиц. В гнездах мелких млекопитающих и птиц сосредоточена основная масса блох, гамазовых клещей, отдельных видов аргазид. Добыть эти гнезда очень непросто. Раскопку начинают от наружного отверстия норы, по возможности предварительно отлавливают хозяев, затем проверяют наличие эктопаразитов по ходам норы. По мере раскопки определяют направление хода шлангом, прутом или проволочным щупом, а появляющиеся ответвления отмечают прутьями.

Раскопка гнезд полевок осложняется из-за обилия ходов и наружных отверстий. У видов с хорошо выраженной колонией ведут фронтальную раскопку по ходам нор от периферии к центру.

Обнаруженное гнездо, стараясь не нарушать его целостность, заключают в мешочек, куда затем собирают и подстилающий гнездо субстрат. Брать на исследование нужно свежее, обитаемое гнездо, которое легко отличается от старых гнезд по цвету и характеру гнездового материала. Оно сухое и более светлое, чем старое, без плесени и гниющего субстрата. Разборку гнезд желательно проводить не позже следующего дня после раскопки во избежание гибели или перехода его обитателей в следующую фазу развития. Разбирают гнезда обычно в лаборатории.

Сбор и учет численности иксодовых клещей в природных биотопах. В природе голодных иксодовых клещей во всех фазах их развития можно обнаружить на траве, ветках кустарников, поверхности почвы, где они сосредоточиваются в ожидании прокормителя. Клещей собирают на маршрутах, закладываемых в разных биотопах, чередуя редко и часто посещаемые людьми и скотом участки. Ранней весной до начала выпаса скота обследуют пастбища.

Сборы клещей в солнечную погоду проводят в утренние и вечерние часы при отсутствии росы и при слабом ветре. В пасмурные дни хорошие сборы получаются в дневные часы. Учеты на маршрутах проводят 1–3 раза в период наибольшей активности клещей.

В зависимости от характера обследуемой территории и экологических особенностей клещей применяют различные способы их сбора и учета.

На степных участках клещей собирают на «волокушу», т. е. на отрез (1,5–2 м длины) однотонной светлой ворсистой ткани (фланель). В швы противоположных узких сторон отреза вставляют по рейке. К верхней рейке прикрепляется шнур, за который сборщик медленно протягивает «волокушу» (сбоку от себя) по участку. Клещи цепляются за ткань, с которой их снимают мягким пинцетом и помещают в пробирку.

На луговых и лесных участках с высокой травой и кустарниками клещей собирают на флаг из такой же вышеупомянутой ткани. Кусок материи длиной 1 м и шириной 60 см прикрепляют узкой стороной к палке. Развернутый флаг-сборщик протаскивают сбоку от себя, подсчитывая пары шагов. Подсчет шагов ведут по 25-метровым отрезкам (16–18 пар шагов), в промежутках между которыми осматривают флаг и одежду сборщика. Обычно на каждом маршруте при учетах должно быть набрано не менее 1000 м расстояния и 2 ч времени.

Обилие клещей выражают числом особей, собранных с флага (волокуши) и одежды учетчика на 1 км маршрута.

В качестве единицы учета можно использовать время движения по маршруту -1 ч (среднее число клещей, собранных с учетчика и ловчего приспособления за 1 ч учета). Для учета численности взрослых Hyalomma plumbeum plumbeum оценивают число нападающих на одного человека клещей за 1 ч нахождения учетчика в определенном биотопе (1 чел./ч).

Для транспортирования пробирки или флаконы с клещами обертывают мягким материалом и упаковывают в плотно закрывающийся металлический пенал.

Сбор и учет численности иксодовых клещей с крупных млекопитающих. Большинство иксодовых клещей в процессе своего развития меняет хозяев. Прокормителями для личинок и нимф обычно служат мелкие позвоночные животные, включая птиц, рептилий, для половозрелых особей – крупные млекопитающие. Особенно тщательно подвергают осмотру крупных млекопитающих.

В период максимальной активности клещей одновременно со сбором для лабораторного исследования проводят учеты их численности.

Клещей с сельскохозяйственных животных собирают в населенных пунктах, на фермах, пастбищах в присутствии хозяина или ответственного лица. В каждом из пунктов сбора осматривают не менее 10 голов, отдавая предпочтение систематически выпасаемым животным. Особое внимание при сборе клещей уделяют местам их концентрации: шея, подгрудок, ушные раковины, веки, подмышечные впадины, вымя, основание и конец хвоста.

Присосавшихся иксодовых клещей снимают жестким пинцетом с узкими длинными браншами, ухватив за основание хоботка. Можно снимать руками в тонких резиновых перчатках. Отрывают клещей при любом способе не резко, а осторожно, расшатывающими движениями или вращая клеща вокруг продольной оси тела, чтобы не оторвать хоботок. Место прикрепления клеща можно смазать маслом, вазелином, это способствует его отпадению.

Клещей, собранных с разных видов животных (овец, коров, лошадей, собак и т. д.), помещают в отдельные пробирки. В этикетке, кроме обычных данных, указывают, выпасается животное или находится на стойловом содержании.

Отлов и учет численности кровососущих двукрылых. Сбор комаров, мокрецов, мошек, слепней в очагах зоонозов проводят, главным образом, для их лабораторного исследования, а также в целях изучения экологии, численности, суточной активности, частоты нападения на человека. Преимаги-нальные фазы развития у этих насекомых проходят в воде или влажных биотопах. Взрослые особи – активно нападающие летающие паразиты. Кровью теплокровных питаются преимущественно самки, самцы способны питаться соками растений либо не питаются вовсе.

В природе имаго находят убежища среди растительности, в норах, пещерах, помещениях для скота или других укромных местах. Комары и мокрецы нападают обычно в вечерние и утренние часы, днем – только в тенистых и влажных биотопах. Мошки и слепни на открытом воздухе активны в светлое время суток.

Сбор и учет их производится при нападении на человека или животных. Для отлова нападающих кровососов используют стандартный энтомологический сачок (диаметр – 30 см, глубина мешка – 70 см, ручка – 10–20 см). Выбирают насекомых из него через каждые 10 взмахов вокруг себя, так как лишь при этой единице учета можно получить достоверный показатель их численности (среднее число кровососов). Для репрезентативного учета необходимо сделать не менее 100 взмахов. Учет кровососущих двукрылых проводят также «на себе» по методу А.В. Гуцевича. Собирают нападающих на учетчика насекомых эксгаустером или пробиркой. За учетную единицу времени принимают 20 мин, а при низкой численности – 30 или 60 мин.

Сборы на животных проводят теми же способами, что и на человеке, при этом удается собрать большее число видов и экземпляров кровососов.

Наиболее полный учет всех видов летающих кровососов обеспечивается методом учетного колокола Мончадского. Колокол представляет собой цилиндрический колпак из тонкого белого материала, растянутого с помощью обруча. Под поднятым колоколом располагается учетчик, являющийся одновременно приманкой. После 5-минутной экспозиции колоколом быстро накрывают наблюдателя, который отлавливает оказавшихся внутри насекомых эксгаустером или пробиркой.

Эффективность отлова слепней этим методом повышается, если приманкой служит небольшое животное.

Модификацией белого колокола Мончадского является колокол Березанцева, сшитый в виде конусообразного колпака из черной непрозрачной материи. К отверстию на вершине конуса крепят садок из светлой сетчатой ткани. После экспозиции (приманка – человек) колокол опускают, оказавшиеся в темноте насекомые закономерно скапливаются в пропускающем дневной свет садке.

Таким же образом устроена чучелообразная ловушка Скуфъина, сшитая в виде чехла из темной материи и растянутая на специальном каркасе. Нижняя сторона ловушки открыта, верхнее отверстие накрывают прозрачным садком, устроенным наподобие верши. Кровососы, привлеченные формой и цветом ловушки, напоминающей крупное животное, влетают внутрь чехла и устремляются в садок. Этой ловушкой при незначительных трудозатратах отлавливают большое количество некоторых видов мошек и слепней.

Для отлова в любое время суток комаров и мокрецов, как в природе, так и в помещениях, применяют двойные ловчие пологи. Во внутренний полог небольшого размера помещают приманку (человека или животное), а кровососам обеспечивают доступ в пространство между внутренним и наружным пологами, откуда их извлекают через несколько часов экспозиции.

Самок, завершивших нападение на прокормителей, совместно с голодными самками и самцами учитывают методом кошения по растительности энтомологическим сачком на удлиненной (до 1,5 м) рукоятке. Сборы проводят днем в теплую тихую погоду в период минимальной активности вида.

Для сбора и учета численности мошек и мокрецов часто используют клеевые листы (липучки) в местах концентрации этих насекомых в природе, в убежищах прокормителей или вблизи них. Учетной единицей обычно служит экспозиция 1 листа размером 20x30 см в течение одной ночи.

Отловленных комаров для сохранения живыми помещают в садок (с проволочным остовом в виде куба), обтянутый марлей или мельничным газом, закрывают влажной тканью и ставят в прохладное место.

Садки со слепнями содержат также в тени, прикрытыми темной материей. На верхнюю стенку садка кладут тампон из ваты, пропитанный подсахаренной водой. В лабораторию кровососущих двукрылых доставляют в термоконтейнерах с сухим льдом или в сосудах Дьюара.

В целях количественного учета преимагинальных фаз развития насекомых собирают их личинки и куколки в местах вы-плода (из влажного грунта, с водных растений, в толще воды).

Учетной единицей служит среднее число особей на единицу поверхности биотопа либо на одно растение.

Для учета личинок и куколок комаров в водоемах пользуются сачком (обод – 20 см, глубина мешка – 25 см). Его погружают в воду на глубину половины диаметра обода с небольшим разворотом вверх и протягивают по поверхности воды на расстояние 1 м. Обычно в одном участке водоема делают 5-10 проводок. Обилие определяют по среднему числу особей на одну проводку. Личинок и куколок мокрецов, живущих в воде, также собирают сачком, предварительно взмутив воду.

Сбор и учет численности эктопаразитов в населенных пунктах. Сбор блох и клещей в помещениях проводят путем протаскивания по поверхности пола фланелевого флажка размером 70x100 см. При их наличии берут пробы мусора.

Из щелей клещей извлекают пинцетом и кисточкой, а блох собирают в широкие емкости с водой, расставляя их на ночь на полу.

Более удобным методом является учет эктопаразитов с помощью клеевых листов, сложенных на ночь в укромных местах помещения из расчета 1 лист 20x30 см на 5 м² пола. Для клеевых листов используется пергаментная бумага и калька размером 26x36 см.

Клеевую массу готовят из двух весовых частей канифоли и одной части касторового, вазелинового или машинного масла. В нагретое до кипения масло небольшими порциями добавляют, постоянно помешивая, измельченную канифоль.

Для увеличения срока годности клеевой массы ее готовят с добавлением глицерина – 25 весовых частей канифоли, 17 частей касторового масла и 8 частей глицерина (или в соотношении 3:2:1 соответственно). Изготовленную массу в теплом виде наносят ровным слоем на листы, оставляя поля по 3 см. При их хранении и транспортировке клеевые листы складывают попарно, клеевой поверхностью внутрь. Попавших на клеевой лист паразитов, предназначенных для исследования, снимают пинцетом или скальпелем и переносят в пробирку, снабжая ее этикеткой.

Показателями численности эктопаразитов в жилье человека служат индексы обилия на 10 м² пола или на 1 клеевой лист.

Сбор и учет численности эктопаразитов проводят также при очесе всех грызунов (синантропных и диких), отлавливаемых в населенных пунктах. При этом учитывают раздельно животных, добытых непосредственно в постройках и на прилегающей к ним территории.

Подготовка эктопаразитов к лабораторному исследованию. Подготовку эктопаразитов к исследованию проводят в специальном боксе или бактериологической комнате лаборатории, где для этого оборудуют отдельный стол. Перед исследованием их усыпляют эфиром. Экспозиция анестезии не должна превышать 2 мин.

Сортируют членистоногих в чашках Петри, разбирая по группам: блохи, иксодовые, гамазовые клещи, вши и т. д. Перед исследованием эктопаразитов их идентифицируют, по возможности, до вида.

При изучении блох определяют пол и, при надобности, регистрируют физиологические показатели (самок с яйцами, степень развития жирового тела, стадии переваривания крови). У иксодовых клещей отмечают фазы развития, отделяют пивших особей от голодных и отбраковывают непитавшихся личинок, непригодных для бактериологического исследования.

Попутно, в процессе сортировки, эктопаразитов группируют в пробы. В них включают определенное число особей, добытых с одного адреса («точки») или однотипных объектов. Так, например, при исследовании на чуму в одну пробу включают по 20–30 (не более 50) блох или мелких клещей, вшей.

Иксодовых клещей исследуют отдельно по фазам развития и в одну пробу берут пивших самок не более 3, голодных – до 30; нимф пивших – до 15, голодных – до 50; личинок пивших – до 30.

Особые требования предъявляются к материалу, доставляемому на вирусологическое исследование. Кровососущих двукрылых доставляют в лабораторию в жидком азоте, остальных членистоногих – в жидком азоте или живыми.

Обычно первичную обработку материала проводят в полевых условиях. Живых комаров обездвиживают табачным дымом и определяют до вида (если это возможно) или 10 % сбора комаров складывают в отдельные флаконы с ватой (или на матрасике) для последующего определения.

Комаров, предназначенных для исследования, группами по 100–200 особей помещают в пластиковые пробирки и ставят в жидкий азот, где хранят до исследования.

Мошек, мокрецов собирают, хранят и транспортируют также, но в пробы берут от 200 до 400 особей в зависимости от объема собранного материала. В случае обработки сборов в лабораторных условиях их разборка проводится на охлажденной поверхности.

Из иксодовых клещей, если их доставляют в жидком азоте, формируют группы из 10–50 особей (одного вида, одной фазы развития, с учетом объекта и места сбора). Иксодовых клещей, доставляемых в живом виде, содержат в холодильнике в специально оборудованных пробирках (влажных камерах). В такую пробирку наливают воды на 1/3-1/4 объема и плавным движением вплотную к воде вводят ватный тампон. Вслед за ватным вставляют ватно-марлевый тампон, плотно прилегающий к стенкам пробирки. Расстояние между этими тампонами составляет 5 мм. К концу ватно-марлевого тампона привязывают крепкую нитку, один конец которой выступает из пробирки на 3–4 см, она служит для извлечения ватномарлевого тампона и находящихся на нем клещей. Внутрь пробирки можно поместить гармошку из фильтровальной бумаги. Пробирку закрывают ватно-марлевой пробкой. Пробирки и материал, по возможности, должны быть стерильными. Непродолжительное время (до недели) иксодовые клещи могут сохраняться живыми в обычных пробирках с травой или мхом в прохладном месте.

Живых аргасовых клещей можно содержать в пробирках, на дно которых помещают сложенную гармошкой фильтровальную бумагу.

Количество гамазовых клещей и блох в пробе не должно превышать 100 экземпляров.

Эктопаразиты, поступившие в лабораторию в консервирующей жидкости, разборке не подлежат.

Вскрытие членистоногих может проводиться с целью определения их физиологического возраста или зараженности тем или иным возбудителем. Членистоногих вскрывают на стерильном предметном стекле (лучше с лункой), помещенном в чашку Петри, в капле физиологического раствора. Комаров вскрывают в капле воды. Препаровальные иглы держат в стакане со спиртом и периодически обжигают. Членистоногих предварительно слегка усыпляют эфиром и 1–2 с промывают в 96 °-м спирте.

При вскрытии блох острой левой иглой фиксируют голову или грудь блохи. Правой лопатовидной иглой надрезают хитин между 2-м и 3-м члениками груди с брюшной и спинной сторон. Затем правой иглой отсекают часть хитина позади пигидия, отделяя конец задней кишки. Придерживая правой иглой блоху за брюшко, а левой за голову, потягиванием левой иглой кпереди, через просвет между члениками извлекают желудочно-кишечный тракт и отделяют его от грудных сегментов.

Клеща при вскрытии придерживают левой рукой с помощью тупой иглы или пинцета. Правой рукой острой лопатовидной иглой отсекают край тела по всей окружности. Этот способ применим к аргасовым клещам, голодным иксодовым.

У крупных сытых иксодовых клещей осторожно надрезают бок тела, вводят в появившуюся щель ножницы и разрезают хитин по окружности тела. В этот момент клеща лучше прикалывать к восковому дну препаровальной ванночки и избегать разбрызгивания внутреннего содержимого. У вскрытого клеща приподнимают дорзальные покровы и извлекают внутренности брюшка. Возможно разрезание копьевидной иглой кожных покровов брюшка, но делать это надо осторожно, опять же избегая разбрызгивания, лучше под прикрытием чашки Петри.

У комаров перед вскрытием отрезают крылья и ноги. Придерживая препаровальной иглой брюшко, копьевидной иглой рассекают тело комара примерно посредине грудного отдела. В задней части тела остаются желудочно-кишечный тракт, мальпигиевы сосуды и половые железы, в передней – глотка, пищевод и слюнные железы. Для извлечения органов брюшка надрывают хитиновый покров между II и III сегментами, считая от его заднего конца. Затем одну иглу втыкают в грудь, другую – в конец брюшка и осторожно раздвигают их в разные стороны. Покровы брюшка легко снимаются с внутренних органов, которые прикреплены к его последнему сегменту.

Слюнные железы можно отпрепарировать сходным образом, т. е. надо разорвать хитиновый покров за головой комара и двумя иглами, воткнутыми одна в грудь, другая – в голову, разъединить эти отделы.

При другом способе у комара отсекают голову, надавливают иглой плашмя на его грудь и проводят ею кпереди. В любом случае из надреза выступает беловатый комочек, в котором обнаруживаются слюнные железы. Определение физиологического возраста комаров проводят на основании изменения трахейной системы, желудка и яичников самок. Описанными методами препарируют и других кровососущих двукрылых.

Составление обзора и прогноза численности эктопаразитов

В тексте справки о проведенной энтомологической работе основное внимание уделяется описанию численности и видового состава эктопаразитов-переносчиков, дается краткое описание ландшафтно-экологических районов, метеоусловий за прошедший период и состояния численности хозяев-носителей, методов сбора и учета членистоногих. Анализируя ее результаты, проводят сравнение с данными за прошлые годы или более короткие периоды (полугодия, сезоны, месяцы). Обзоры снабжаются таблицами по утвержденным формам и картами-схемами численности основных видов. Особо отмечают редко встречающиеся виды эктопаразитов или встреченные впервые и найденные за пределами известного для них ареала. В этих случаях дается подробное описание условий, места и времени находки. На основании изучения материалов по численности, алиментарной и генеративной активности, физиологическому состоянию переносчиков, с привлечением данных по численности прокормителей и метеорологических наблюдений, делается прогноз численности наиболее массовых видов. Универсальных и абсолютно однозначных критериев прогноза не существует.