Читать книгу "Анализы. Актуальные сведения по лабораторным исследованиям под рукой"

– гнойный перитонит;

– гнилостный перитонит;

– каловый перитонит;

– желчный перитонит;

– мочевой перитонит.

3. По распространенности процесса:

– местный перитонит: занимает 1–2 смежные анатомические области (неотграниченный); отграниченный (инфильтрат или абсцесс брюшной полости);

– диффузный перитонит: занимает 2–3 смежные анатомические области;

– разлитой перитонит: занимает не менее трех анатомических областей до 2/3 брюшины, или один из этажей брюшной полости;

– общий перитонит (воспаление всей брюшины).

4. По стадиям развития:

– реактивная фаза;

– токсическая фаза;

– терминальная фаза.

Клиническая картина перитонита наслаивается на проявления основного заболевания (острый аппендицит, острый холецистит и т. д.). Характеризуется нарастающими болями в животе, симптомами интоксикации, тошнотой и рвотой, вздутием живота, гипертермией. При обследовании больного выявляются сухой язык, тахикардия, живот при пальпации напряжен (доскообразный живот) и болезнен, определяются симптомы раздражения брюшины (симптом Щеткина – Блюмберга, симптом Раздольского). В поздние стадии присоединяются парез и паралич желудочно-кишечного тракта, в анализах крови отмечаются лейкоцитоз, сдвиг лейкоцитарной формулы влево, токсическая зернистость нейтрофилов, увеличивается лейкоцитарный индекс интоксикации, повышается СОЭ.

Лечение

Лечение перитонита только оперативное, которое состоит из трех основных этапов:

1) ликвидации источника перитонита: аппендэктомия, холецистэктомия, ушивание перфоративного отверстия и т. д.;

2) санации брюшной полости, которая состоит в эвакуации экссудата, при разлитом и общем перитонитах необходимо промывание брюшной полости растворами антисептиков;

3) адекватного дренирования отлогих участков брюшной полости: подпеченочного и поддиафрагмального пространств, боковых каналов, полости малого таза.

После операции проводят инфузионную дезинтоксикационную терапию, антибактериальную терапию, стимуляцию моторики желудочно-кишечного тракта, стимуляцию защитных сил организма, парентеральное питание.

Перикардит

Перикардит – это воспаление сердечной сумки, сопровождаемое выпотом (серозным, фибринозным, гнойным, геморрагическим); наблюдается как сопутствующее явление при остром суставном ревматизме, скарлатине, кори, септицемии, цинге, левостороннем плеврите, пневмонии, страданиях клапанов, бугорчатке. Симптомы: боль в области сердца, лихорадка, цианотический вид, одышка, учащенный пульс, шум. Часто перикардит заканчивается смертью.

Возбудители инфекционных перикардитов у человека – кокки, вирусы, микобактерии туберкулеза и др. В их развитии играет роль сенсибилизация перикарда продуктами белкового распада тканей и бактериальными токсинами; такой аллергический механизм может играть и самостоятельную патогенетическую роль. Чаще других встречается ревматический перикардит. К неинфекционным относят перикардит при уремии, инфаркте миокарда, травматический, послеоперационный и др. Кроме того, выделяют идиопатический доброкачественный перикардит, причины которого еще не ясны. Фибринозный перикардит связан с отложением на листках перикарда сухого налета (фибрина). Такое явление наблюдается при туберкулезе, уремии, инфаркте миокарда и других заболеваниях. Экссудативный перикардит, при котором щель между листками перикарда заполняется выпотом (экссудатом), может быть серозным или серозно-фибринозным (туберкулезный, ревматический, идиопатический и др.), геморрагическим (туберкулезный, при опухолях и др.), гнойным и гнилостным (при абсцессе легкого и др.). При экссудативном перикардите исходом заболевания могут быть полное рассасывание выпота или образование спаек и сращений листков перикарда. Лечение зависит от причины перикардита: противоревматическое, противотуберкулезное и др.; применяют антибиотики, противоаллергические, противовоспалительные, симптоматические средства, при необходимости удаляют экссудат с помощью пункции или хирургическим путем.

Классификация перикардитов

По характеру экссудата:

1) серозный;

2) геморрагический;

3) слипчивый;

4) гнойный;

5) фибринозный перикардит (панцирное сердце).

Клиническая картина

Ведущим проявлением перикардита является нарушение деятельности сердца, или сердечная недостаточность, проявляющаяся одышкой, синюшностью кожных покровов, сердцебиением, слабостью, утомляемостью, отеками на нижних конечностях.

При обследовании выявляется тахикардия, при аускультации – ослабление сердечных тонов, шум трения перикарда, при перкуссии – расширение границ сердца. При рентгенографии органов грудной клетки в двух проекциях отмечается шарообразная форма сердца.

Лечение

В начальных стадиях проводят консервативное лечение. При скоплении экссудата производят пункцию полости перикарда, при фибринозно-гнойном перикардите выполняют торакотомию, перикардотомию с эвакуацией экссудата. После пункции или операции проводят антибактериальную, дезинтоксикационную, кардиогенную терапию.

Необходимо помнить о целесообразности определения в плевральной жидкости активности амилазы, так как плевральный выпот нередко связан с острым панкреатитом. В этом случае активность амилазы в плевральной жидкости выше в два и более раза, чем в сыворотке крови. Повышение содержания амилазы в плевральной жидкости может быть при перфорации пищевода, в этих случаях фермент поступает из слюнной железы с проглоченной слюной и попадает в плевральную полость уже через 2 ч после наступления перфорации. Поэтому при подозрении на перфорацию пищевода необходимо определить активность амилазы в плевральной жидкости. Установить источник происхождения амилазы в выпоте можно при определении активности общей и панкреатической амилазы.

Характеристика ферментативного экссудата при остром панкреатите

Наличие ферментативного экссудата подтверждает острый панкреатит.

Общие признаки ферментативного экссудата:

1) высокая активность амилазы (в 2–3 раза выше амилазы крови);

2) слабощелочной характер (рН > 7,0);

3) высокая концентрация белка (более 20 г/л);

4) отсутствие фибрина;

5) стерильность.

При нетяжелом панкреатите ферментативный экссудат или отсутствует, или если имеется, то в небольшом количестве, как правило серозный.

Количество ферментативного экссудата и интенсивность его окраски (от слабо-розовой до черной) прямо пропорциональны тяжести острого панкреатита.

У больных тяжелым панкреатитом ферментативный экссудат (несколько капель в пробирку с кровью) вызывает гемолиз крови.

Гнойные экссудаты

Одним из самых распространенных инфекционных процессов, наблюдающихся в настоящее время, является продукция гнойного (иногда серозно-гнойного) экссудата как результат бактериального инфицирования полости, ткани или органа тела. Такие инфекции могут проявляться в виде достаточно простых и безобидных папул или множества гнойных карманов в абсцессах в одном или нескольких анатомических участках.

Экссудат состоит из белых кровяных телец, преимущественно полиморфно-ядерных лейкоцитов, инородных организмов (микробов) и смеси транссудата с фибрином. В одних случаях экссудат может накапливаться в межклеточном пространстве в пределах ткани, например фурункул или подкожный нарыв, в то время как в других случаях экссудат образуется в связи с открытыми ранами, из которых вытекают мутная жидкость или гной.

Как анатомические участки, вовлеченные в экссудативные процессы, так и микроорганизмы, вызывающие эти процессы, могут быть весьма разнообразными.

Согласно рекомендациям ВОЗ, все наиболее часто встречающиеся бактериальные патогены разделены по уровням приоритетности.

1. Патогены высокого уровня приоритетности:

– пиогенный стрептококк;

– золотистый стафилококк.

2. Патогены среднего уровня приоритетности:

– энтеробактерии;

– псевдомонады и другие неферментирующие грамотрицательные бактерии;

– клостридии;

– бактероиды и другие анаэробы;

– стрептококки (других видов).

3. Патогены низкого уровня приоритетности:

– Bacillus anthracis;

– Mycobacterium tuberculosis, Mulcerans и др.;

– Pasteurella multocida.

Возбудители вирусных инфекций в отличие от грибов и бактерий очень редко являются продуцентами гнойного экссудата.

Взаимосвязь лечащего врача и врача-лаборанта особенно важна при постановке диагноза и выборе тактики лечения больного при наличии заболевания, сопровождающегося гнойной инфекцией. Врач-лаборант должен сотрудничать с клиницистом, чтобы обеспечить взятие материала по всем правилам и его незамедлительную доставку в лабораторию для безотлагательного проведения необходимых исследований.

Современный протокол микробиологического исследования клинического материала, полученного от пациентов с раневой инфекцией

Хирургический материал может быть получен при пункции местных абсцессов или во время других хирургических процедур. Хирургу следует посоветовать отбирать несколько маленьких кусочков различных тканей и имеющиеся образцы гнойного экссудата. Если возможно, то не следует пользоваться ватным тампоном. Экссудат необходимо отбирать стерильным шприцем с иглой. Если использован ватный тампон, следует отбирать как можно больше экссудата и поместить тампон в соответствующую емкость для отправки в лабораторию. Некоторые примеры клинических состояний и обнаруживаемые при этом микроорганизмы в различных образцах хирургического материала приведены ниже.

Перитонеальная полость наиболее часто содержит грамотрицательные кишечные бактерии, грамотрицательные анаэробные палочки (Bacteroides fragilis) и клостридии.

Межклеточный абсцесс может содержать любые микроорганизмы как одного вида, так и смешанные: наиболее часто выделяются грамположительные кокки и грамотрицательные бактерии. Необходимо учитывать возможность присутствия анаэробных бактерий и амеб в зависимости от места расположения абсцессов.

Лимфатические узлы наиболее часто вовлекаются при системных инфекциях. Они увеличиваются в размерах и часто имеют тенденцию к аккумулированию гнойного экссудата. Если лимфатический узел флюктуирует, содержащаяся в нем жидкость может быть пунктирована лечащим врачом. Биоптат или пунктат лимфатического узла ребенка следует исследовать на наличие Mycobacterium tuberculosis или других микобактерий. Дополнительно материал исследуют на наличие стафилококков, стрептококков и грамотрицательных кишечных бактерий.

Кожные покровы и подкожная клетчатка являются локусами как для абсцессов, так и для раневых инфекций. Подкожные абсцессы, как правило, вызываются стафилококками. Открытые, поврежденные, мокнущие кожные покровы часто поражены β-гемолитическим стрептококком и (или) стафилококком, как при импетиго. Другие разновидности кожных поражений, требующие хирургического вмешательства, часто рассматриваемые как результат внутрибольничных инфекций, – это пролежни. Бактерии, являющиеся комменсалами кожи или представителями нормальной микрофлоры кишечника, обладают способностью к пролиферации на поверхности язвы, что вызывает ее неприятный запах и вид.

Ожоги склонны к инфицированию различными видами бактерий. Наиболее часто обнаруживаемыми бактериальными агентами являются стафилококки и синегнойная палочка.

Выпоты. Иногда серозная или гнойная жидкость собирается в полостях, в которых в норме содержится очень малый объем стерильной жидкости, например в перикардиальной сумке, плевральной полости, суставах или синовиальных сочленениях. Пунктирование полости иглой в асептических условиях позволяет взять для исследования материал, из которого может быть выделен и идентифицирован возбудитель. Обычно причиной появления выпотов являются бактерии, однако грибы и вирусы также могут быть ответственными за этот процесс. Такие инфекции, как правило, моноспецифичны, но могут встречаться и смешанные (аэробы и анаэробы) случаи. Пункция плевральной полости, например, может выявить пневмококки, зеленящие стрептококки, гемофильные палочки, анаэробные стрептококки и бактероиды.

Взятие и транспортировка материала

Взятие материала требует тесного сотрудничества лаборатории и клинического отделения. Во множестве случаев это единственная возможность получить материал для исследования, поскольку во многих ситуациях «повторного» материала для исследования просто не будет. В связи с этим выполненное по всем правилам взятие материала, его транспортировка и хранение чрезвычайно важны, и каких-либо отступлений от принятой процедуры следует избегать.

Абсцессы. В случае обнаружения абсцесса хирургу или лечащему врачу следует проконсультироваться с бактериологом, чтобы определить дальнейшие действия. Техника забора гноя и кусочков ткани из абсцесса аналогична той, что применяется при хирургической операции. Максимально возможное количество гнойного материала следует забирать шприцем, взятый материал переносят в стерильную емкость в асептических условиях. В том случае, если стерильной емкости не оказалось, взятый материал может быть оставлен в шприце с закрытой иглой. В этом случае сам шприц доставляют в лабораторию.

Следует принять меры к недопущению забора малого количества материала с помощью тампона, когда в действительности имеется большой объем экссудата. Тампон в виде исключения может быть использован только для сбора гноя, когда имеется скудное его количество или когда гной отбирают из анатомической области, требующей обращения с особой осторожностью, например из глаза. Когда кусочки ткани из области абсцесса получены, их необходимо измельчить в маленьком объеме стерильного бульона, используя для этого стерильные ножницы.

Инфицированные рваные, проникающие ранения, послеоперационные раны, ожоги, пролежни. После тщательной обработки операционного поля хирург определяет места, где скапливается гной, расположены некротические ткани, выделяется газ (крепитация) или наблюдаются другие признаки инфекции. Частицы пораженных тканей, предназначенные для лабораторного исследования, помещают в стерильную марлю и затем в стерильную емкость. Гной или другой экссудат должны быть аккуратно собраны и помещены в стерильную пробирку. При необходимости могут быть использованы тампоны.

Свищи или отделяемое лимфатических узлов. В тех случаях, когда свищи или воспаленные лимфатические узлы самопроизвольно дренируются, этот материал должен быть тщательно собран с помощью стерильной пастеровской пипетки с резиновой грушей и помещен в стерильную пробирку. Если самопроизвольного дренирования не произошло, хирургу следует получить материал, используя стерильный шприц с иглой или зонд. Использования тампона по возможности следует избегать.

Выпоты. Большой объем скопившейся жидкости в полостях тела, таких как плевральная полость, брюшная полость, коленный сустав, требует вмешательства хирурга, который в асептических условиях производит прокол, собирает жидкость в стерильную емкость и организует ее быструю доставку в лабораторию для микробиологического и цитологического исследований. В тех случаях, когда продукция экссудата постоянно продолжается и поставлен открытый дренаж, необходимо собрать дренажную жидкость в асептических условиях в стерильную пробирку и отправить ее в лабораторию.

Макроскопическое исследование

Провести оценку образцов гноя или отделяемого ран, отобранных с помощью тампона, очень трудно, особенно когда тампоны были помещены в транспортную среду. Если же образцы гноя получены в стерильной емкости или шприце, бактериологу следует внимательно исследовать их для выявления особенностей цвета, консистенции и запаха.

Цвет. Цветовая гамма гноя может варьировать от желто-зеленого до красно-коричневого. Красный цвет обычно является следствием наличия в нем крови или гемоглобина. Пунктат из первичного амебиазного печеночного абсцесса имеет светло-коричневый или темно-коричневый цвет и желатинообразную консистенцию. Гной из послеоперационных или травматических ран (ожогов) может быть окрашен в зелено-голубой цвет за счет пигмента пиоцианина, вырабатываемого синегнойной палочкой.

Консистенция. Консистенция гноя может варьировать от очень жидкой до очень густой и клейкой. Экссудаты, полученные из суставов, плевральной полости, перикардиального мешка или брюшины, обычно жидкие с возможной градацией от серозных до гнойных.

Гной, полученный из дренажа свищей шейной области, необходимо исследовать на наличие маленьких желтых гранул «серы», которые являются колониями Actinomyces israelii. Наличие серых гранул позволяет поставить предположительный диагноз шейно-лицевого актиномикоза. Мелкие гранулы различного цвета (белого, черного, красного или коричневого) типичны для мицетомы – гранулематозной опухоли, которая обычно поражает нижние конечности (так называемая мадурская стопа) и характеризуется множественными абсцессами и самодренирующимися свищами. Цвет гранул определяется наличием в них «волокнистых» бактерий или мицелиальных грибов. Гной из туберкулезного «холодного абсцесса» (с наличием нескольких характерных признаков воспаления) иногда сравнивают с мягким сыром и называют «казеиновым гноем».

Запах. Отвратительный фекальный запах – один из главных характерных признаков анаэробной или смешанной инфекции. О характерном запахе вместе с результатами микроскопии мазка, окрашенного по Граму, бактериолог должен сразу же сообщить лечащему врачу, поскольку это может повлиять на выбор схемы эмпирической антибактериальной терапии.

Микроскопическое исследование

Каждый образец следует окрашивать по Граму и подвергать микроскопии.

Прямая микроскопия. По требованию лечащего врача или когда имеются основания предполагать наличие грибковой или паразитарной инфекции, следует проводить микроскопию нативного материала. Когда исследуют гной на наличие грибов, его смешивают с каплей 10 %-ной гидроокиси калия.

Сверху материал покрывают покровным стеклом и, используя объектив 10° и 40°, внимательно исследуют на наличие:

1) активно движущихся амеб в пунктате из печеночного абсцесса;

2) дрожжевых клеток Histoplasma capsulatum, var. Duboisii, Blastomyces dermatidis, Candida spp.;

3) грибковых гифов и бактериальных нитей в раздавленных гранулах мицетомы;

4) паразитов, таких как микрофилярии, крючья Echinococcus, яйца Schistosoma, Fasciola и Paragonimus.

Окраска по Граму. Приготовленный мазок микроскопируют в иммерсионном масле, используя объектив 100°. Внимательно просматривают мазок, отмечая наличие и количество (+) следующих клеток:

1) полиморфно-ядерные гранулоциты (клетки гноя);

2) грамположительные кокки, расположенные в виде виноградной грозди (предположительно стафилококки);

3) грамположительные кокки, расположенные в виде цепочек (предположительно стрептококки);

4) грамотрицательные палочки, сходные с колиформами или облигатными анаэробами (бактероиды);

5) крупные прямые грамположительные палочки с «обрубленными» концами – предположительно клостридии или бациллы;

6) разнообразные бактериальные клетки, включая веретенообразные формы палочек. Такая картина свидетельствует о смешанной анаэробной флоре.

Candida или другие дрожжевые клетки, которые выглядят как овальные грамположительные почкующиеся сферы, часто формируют дочерний псевдомицелий.

Серные гранулы актиномицетов или гранулы мицетомы должны быть раздавлены на стекле, окрашены по Граму и исследованы на наличие тонких фрагментарных грамположительных волокон.

Бактериологическое исследование

Посев. В том случае, когда при микроскопическом исследовании обнаружены бактерии или грибы, материал следует засеять на соответствующие питательные среды. Независимо от результатов микроскопического исследования все пробы гноя или экссудата следует посеять как минимум на 3 питательные среды:

1) кровяной агар для выделения стрептококков и стафилококков;

2) агар Мак-Конки для выделения грамотрицательных палочек;

3) бульон, который может служить средой обогащения как для аэробов, так и для анаэробов, например тиогликолевый бульон.

Другие питательные среды следует использовать исходя из результатов микроскопического исследования и нозологической формы инфекции, например в случаях, перечисленных ниже.

При подозрении на наличие стафилококков целесообразно использовать желточно-солевой (магнитно-солевой) агар для получения роста чистой культуры и для предварительной дифференциации между золотистым и другими стафилококками.

При подозрении на наличие стрептококков их идентификацию можно ускорить, положив дифференцирующий диск с бацитрацином на чашку с первичным посевом (кровяная среда).

При подозрении на грибы материал следует засеять в 2 пробирки с агаром Сабуро. Одну из них инкубируют при +35–37 °C, другую – при комнатной температуре.

Гной у больных с артритами, плевритами, остеомиелитами, воспалением подкожной клетчатки, особенно полученный от детей в возрасте до 5 лет, следует высевать на шоколадный агар для выявления гемофильной палочки.

Культивирование в строго анаэробных условиях необходимо осуществлять, если в окрашенном по Граму материале обнаружена «смешанная анаэробная флора», а также когда этот материал имеет типичный неприятный запах. Анаэробный кровяной агар также необходим для роста Actimomyces spp. Анаэробное культивирование потребуется, если лечащий врач подозревает газовую гангрену (клостридии).

Оценка результатов. Выделенные микроорганизмы являются этиологическим агентом воспалительного процесса. При выделении ассоциации микроорганизмов из раневого отделяемого и выпотной жидкости ведущее значение в течении гнойно-воспалительного процесса следует отдавать видам, количественно преобладающим в данной ассоциации.

В лаборатории должен быть произведен подсчет степени обсемененности исследуемого материала. Имеются следующие критерии количественной оценки микробного роста при прямом штриховом посеве раневого отделяемого на 1/2 чашки Петри с плотной питательной средой:

1) степень 1 – очень скудный рост (на плотных питательных средах роста нет, рост только в бульоне);

2) степень 2 – небольшое количество – 10 колоний;

3) степень 3 – умеренное количество – от 11 до 100 колоний;

4) степень 4 – большое количество – более 100 колоний.

Показано, что уровень обсемененности тканей в ране, равный 105 и выше колониеобразующих единиц (КОЕ) на грамм содержимого, является критическим. Превышение этого уровня указывает на возможность генерализации инфекционного процесса. Аналогичного критерия для выпотов пока не найдено.

Определение чувствительности к антибиотикам. Колонии, выросшие на плотной питательной среде, идентифицируют и определяют чувствительность чистой культуры микроорганизма к антибиотикам. Используют или стандартный диско-диффузионный метод, предложенный Керби и Бауэром (метод Керби – Бауэра), или метод серийных разведений – коммерческие тест-системы («стрипы»), представляющие собой набор тех или иных антибиотиков, представленных в двух концентрациях. Этот метод (breakpoint) позволяет избежать трудоемкости стандартного метода серийных разведений, но не теряет при этом его главного достоинства – количественного определения минимальной подавляющей концентрации препарата, соответствующей терапевтической концентрации антибиотика в организме.