Текст книги "250 показателей здоровья"

Кольпоскопия характеризуется отсутствием диффузной или очаговой гиперемии, точечных кровоизлияний, инфильтрации слизистой оболочки влагалища, отечности. У 27 % больных выявляются цервицит, эктропион, эктопия цилиндрического эпителия, доброкачественная зона трансформации, рубцовые деформации шейки матки.

Микроскопические методы. Проводится исследование нативного материала: окрашивание по Граму, окрашивание 0,5 %-ным водным бриллиантовым зеленым. В качестве материала для исследования используются отделяемое сводов и стенок влагалища, цервикального канала, отделяемое уретры, моча. Диагностическими критериями, присущими данному заболеванию, считают небольшое количество лейкоцитов (1–2 в поле зрения), амиловый тест, обнаружение «ключевых» клеток (более 20 %), уменьшение количества палочек Додерлейна. Особым лабораторным признаком является наличие «ключевых» клеток – это слущенные клетки влагалищного эпителия, частично или полностью покрытые грамвариабельной, но чаще – грамотрицательной флорой. На поверхности «ключевой» клетки находится большое количество прикрепленных бактерий, беспорядочно расположенных. Характерен полиморфизм бактерий: диплобациллы (чаще преобладают мелкие формы), кокки, палочки. Применяется окраска мазков по Граму. Главным разграничительным фактором становится упорядоченность расположения палочковых форм бактерий. При гарднереллезе типично резкое снижение числа лейкоцитов во влагалищном отделяемом, тогда как в цервикальном канале наблюдается лейкоцитоз. В отделяемом уретры содержание лейкоцитов нормальное. Палочки Додерлейна единичны или полностью отсутствуют. С целью типовой идентификации гарднерелл используется метод газожидкостной хроматографии.

Реакция иммунофлюоресценции (РИФ). Отличается высокой чувствительностью и специфичностью, превышающими культуральный метод. Однако внедрение РИФ в лабораторную практику замедляется в связи с необходимостью использования дорогих иммунных сывороток против гарднерелл.

Культуральный метод. При росте на питательной среде гарднереллы образуют круглые гладкие колонии размером 0,5 мм. Культивирование предпочтительно проводить при повышенной концентрации углекислого газа или в анаэробных условиях. Оптимальная температура – 35–37 °C,pH – 4,5. Наиболее часто применяются среды: КДС-1 с кровью, шоколадный агар, харьковская сухая среда для выделения гонококков, вагиналис-агар, агар с лошадиной кровью, пептон-крахмал-глюкозный агар. Культуральный метод для диагностики практически не применяется, так как очень трудоемок, требует немалых материальных затрат и особых питательных сред.

ДНК-гибридизация и полимеразная цепная реакция. Методы достаточно сложные, и их использование в практической медицине нецелесообразно, так как вполне достаточно микроскопических исследований.

ВИЧ-инфекция

Возбудитель заболевания – вирус из семейства ретровирусов, и с 1986 г. называется вирусом иммунодефицита человека (ВИЧ). Описаны следующие типы: ВИЧ-1, имеющий около 10 генетических субтипов, и ВИЧ-2, выделенный вначале у пациентов из Западной Африки, но на настоящий момент выделяется у больных синдромом приобретенного иммунодефицита во всем мире и HTLV–IV. Трансмиссивность ВИЧ-2 ниже, чем у ВИЧ-1, а длится заболевание медленнее. Возможно заражение больного обоими типами вируса. Жизненный цикл вируса начинается с присоединения к клетке хозяина. Поражаются клетки, имеющие на поверхности СД-4 антигенный комплекс: преимущественно Т-лимфоциты (хелперы), В-лимфоциты, промиелоциты, астроциты мозга, эпителий кишечника, моноциты/макрофаги, эндотелий капилляров. После проникания вирусной частицы внутрь клетки происходит обратная транскрипция генома вируса, его ДНК-копия проникает в ядро клетки хозяина. После этого начинается продукция вирусной ДНК, белков вируса, его «созревание» и распространение за пределы клетки хозяина. Популяция СД-4 зараженных лимфоцитов каждые 15 дней удваивается.

ВИЧ также может выявляться в плазме примерно у 30 % инфицированных, хотя и в низких количествах (от 10 до 50 частиц вируса в 1 мл). В спинномозговой жидкости число вируса ВИЧ гораздо выше – около 1000 в 1 мл. Передача заболевания происходит не через жидкостные среды, где мало свободного ВИЧ, а через зараженные клетки, которых много в секретах влагалища и шейки матки, семени и которые препятствуют борьбе с вирусом иммунной системы хозяина. С началом размножения ВИЧ-инфицированная клетка погибает, происходит слияние мембран и образование многоядерных гигантских клеток. Количество СД-4 (+) клеток уменьшается на 25–40 кл/мкл в год. Когда показатель СД-4 (+) клеток достигнет 300 кл/мкл, число вируса в крови снова возрастает, а у пациента появляется характерный симптомокомплекс заболевания – связанные с разрушением иммунитета оппортунистические инфекции и злокачественные новообразования. Больному остается до трагического конца даже при противовирусном лечении около 2 лет.

Серологические методы. Наиболее часто используется поиск антител методом иммуносорбции (ELISA). Данный метод обладает высокой чувствительностью и специфичностью, но на ранних этапах инфекции антитела отсутствуют (так называемый феномен «окна»). Прогностическая ценность ELISA зависит от распространенности ВИЧ в обследуемой группе и снижается в общей популяции с невысокой частотой инфекции. При положительном результате теста следует проводить проверочные исследования (к примеру, Western blot-метод хроматографии на геле, изолирующий ВИЧ-антигены: белки сердцевины и оболочки вируса). Можно применять поиск антигенов вируса с использованием моноклональных антител. «Окно» существует только несколько недель, но иногда сохраняется до 6—14 месяцев перед сероконверсией.

ИФА. При постановке ИФА в случае положительного заключения анализ с той же сывороткой проводится еще 2 раза в той же тест-системе. При получении хотя бы еще одного положительного заключения сыворотка направляется в референс-лабораторию, где дополнительно исследуется в другой тест-системе. При получении положительного результата диагностика ВИЧ-инфекции продолжается более специфичным методом иммунного блоттинга (ИБ), позволяющим выявить антитела к отдельным белкам ретровируса. При отрицательном заключении сыворотка повторно изучается в третьей тест-системе. В данной ситуации в зависимости от результатов последнего тестирования либо выдается заключение об отсутствии антител к ВИЧ, либо сыворотка направляется на исследование в ИБ. Результаты, полученные в иммунном блоттинге, могут интерпретироваться как положительные (обнаруживаются антитела к 2 или 3 гликопротеинам возбудителя – gp41, gp120, gp160 для ВИЧ-1 и gp36, gp105, gp140 для ВИЧ-2), отрицательные (отсутствуют антитела к какому-либо антигену) и сомнительные (выявляются антитела к одному гликопротеину и (или) любым протеинам – p17, p24, p31, p51, p55, p66 для ВИЧ-1 и p18, p26, p56, p68 для ВИЧ-2). При отрицательном заключении анализа в ИБ выдается заключение об отсутствии антител к ВИЧ. При получении сомнительного результата обследуемому назначается динамическое наблюдение, а также проводятся повторные исследования на антитела к вирусу через 3 месяца и при сохранении определенных результатов – еще через 3 месяца. Если через 6 месяцев после первого обследования вновь будут получены сомнительные результаты и у пациента не будут выявлены клинико-эпидемиологические признаки ВИЧ-инфекции, то результат расценивается как ложноположительный. Только после положительного результата в ИБ возможно заключение об инфицированности лица ВИЧ.

ПЦР. Особую ценность для диагностики ВИЧ имеет ПЦР в начале болезни – еще до появления антител, когда инфицирование уже произошло, а также на поздних стадиях заболевания, когда количество антител может снижаться вплоть до полного исчезновения. Однако чувствительность метода ПЦР в целом на 1–2 % ниже, чем чувствительность ИФА. В свою очередь, это может приводить к появлению ложноотрицательных результатов. Специфичность ПЦР во многом определяется качеством используемых в наборе ингредиентов, особенно праймеров.

В настоящее время наиболее важным прогностическим критерием инфекции стал показатель РНК ВИЧ. Показано, что риск развития СПИД и смерти прямо связан с исходным показателем РНК ВИЧ в крови. Этот показатель оказался информативнее, чем число СД-4 лимфоцитов. Определение показателя РНК ВИЧ позволило оценить выживаемость пациентов: при уровне менее 5000 копий/мл прогнозируемая длительность жизни превышала 10 лет; при показателе 5—13 тыс. копий/мл средняя продолжительность жизни составила 9,5 г.; при уровне 13–36 тыс. копий/мл – 7,4 г.; при уровне более 36 тыс. копий/мл – 5,1 г.

Микоплазменная и уреаплазменная инфекции

Возбудители этой группы инфекций – микоплазмы – одни из самых мелких прокариотов. Согласно классификации их причисляют к семейству Mycoplasmataceae. Это семейство дифференцируют на 2 рода – Mycoplasma, включающий в себя около 100 видов, и Ureaplasma, насчитывающий 3 вида. Микоплазмы, паразитирующие у человека, бывают 5 видов – M. pneumonie, M. genitalium, M. hominis, M. incognitis, U. urealiticum. Микоплазмы – группа мелких микроорганизмов (150–200 нм), имеющих способность к размножению на бесклеточных средах.

Особые признаки микоплазм и уреаплазм – это отсутствие обычной клеточной стенки и способность паразитировать на поверхности клеток хозяина. Микоплазмы отграничены от окружающей среды лишь трехслойной цитоплазматической мембраной. В цитоплазме имеются нуклеотид, распределенный в виде нитей ДНК, внутрицитоплазматические мембранные структуры, рибосомы. Клетки могут быть разнообразны по форме: глобулы, нитевидные, грушевидные. Диаметр сферических клеток составляет от 0,3 до 0,8 мкм. Микоплазмы относят к грамотрицательным микроорганизмам, они обладают низкой чувствительностью к большинству красителей. В последнее время доказано, что микоплазменная инфекция влияет на репродуктивную функцию. Уреаплазменная инфекция приводит к снижению подвижности сперматозоидов, возникновению «пушистых хвостиков», так как «прилепляются» к их поверхности, возникновению незрелых форм сперматозоидов и изменению структуры клеток (к примеру, спирализации). Уреаплазмы также могут затруднять процесс проникновения сперматозоидов в яйцеклетку. А заражение эндометрия может приводить к инфицированию зародыша и прерыванию беременности на ранних сроках.

Микробиологический метод. Для него берут пробы со слизистой уретры, периуретральной области, сводов влагалища, из канала шейки матки. Пробы мочи для выделения микоплазм желательно брать из утренней первой порции. Также можно брать для посева секрет простаты. Микробиологическому исследованию подлежат сперма, воды, ткани абортированных плодов, полученные при амниоцентезе.

В настоящее время показано, что все виды микоплазм можно выращивать на искусственных средах, в основу которых входят высококачественные пептоны, например триптиказно-соевый бульон, ферментативный перевар из бычьих сердец. Для выявления чувствительности выделенной культуры к антибиотикам применяют метод разведений в жидкой среде.

Серологические методы обнаружения микоплазменной инфекции основываются на выявлении специфических антител, которые определяются с помощью реакции пассивной гемагглютинации. А для выявления антигенов возбудителей применяют реакцию агрегат-гемагглютинации, реакцию прямой и непрямой иммунофлюоресценции. Следует отметить, что гуморальные антитела к Ureaplasma urealyticum и Mycoplasma hominis могут присутствовать у клинически здоровых лиц. Также инфицирование людей Ureaplasma urealyticum может не всегда сопровождаться повышением уровня антител.

Метод ПЦР. В этом случае исследуются соскобы из уретры, со стенок влагалища и цервикального канала. Следует помнить, что при взятии материала из цервикального канала необходимо убрать слизистую пробку. Ее удаляют ватным тампоном и лишь затем берут материал.

Весьма чувствительными являются методы люминесцентной и иммунолюминесцентной микроскопии.

Глава 9. Инфекционные заболевания

Инфекционные заболевания – заболевания, которые являются результатом взаимоотношений макроорганизма, микроорганизма и внешних факторов. Микроорганизм должен быть патогенным или условно-патогенным по отношению к макроорганизму, что является одним из основных условий возникновения инфекции.

Классификация

Общепринятой классификации не существует. Наибольшее применение получила классификация по Л.В. Громашевскому, основанная на механизме распространения возбудителя. Согласно этой классификации инфекционные заболевания делятся на:

1) кишечные инфекции;

2) инфекции дыхательных путей;

3) «кровяные» инфекции;

4) инфекции наружных покровов;

5) инфекции с различными механизмами передачи.

Кишечные инфекции

Брюшной тиф, паратиф А, паратиф В

Брюшной тиф, паратиф А, паратиф В – кишечные инфекционные заболевания, которые объединены схожими возбудителями, клиникой, патогенезом. Характеризуются возбудителями рода сальмонелл, которые поражают лимфатическую систему тонкого кишечника, легко проникают в кровь, создавая бактериемию и, как следствие, выраженную интоксикацию, гепатоспленомегалию (увеличение печени, селезенки).

Очень важно рано диагностировать брюшной тиф и паратифы, так как заболевания отличаются высокой заразностью больного, которая увеличивается с каждым днем заболевания.

В диагностике тифов большое значение имеют лабораторные данные. В лабораторной диагностике применяют бактериологический и серологический методы исследования. Среду наибольшего пребывания возбудителя определяет период заболевания. Первые 10–14 дней возбудителя больше всего обнаруживается в крови, до 20 дней – в фекалиях. В течение всего заболевания возбудитель обнаруживается в дуоденальном содержимом, и потому исследование этой биологической среды дает наиболее достоверную информацию о наличии или отсутствии тифа, несмотря на период. Выделение культуры микробов в крови показывает высокую интенсивность инфекционного процесса. Обнаружение возбудителя в фекалиях указывает на высокую заразность заболевания или бактерионосительство. Бактерионосительство подтверждается отсутствием клинической картины и реакцией непрямой гемагглютинации с Vi-антигеном.

Идентификация возбудителя с изучением его свойств происходит в ходе бактериологического исследования, одним из результатов которого является выделение культуры из биологических сред человека. Это происходит за счет посева препаратов, приготовленных из этих биологических жидкостей, на питательную среду.

Положительные результаты посева крови (выделения гемокультуры) при брюшном тифе возможны с первого дня заболевания и до завершения лихорадочного периода. Кровь получают из вены и засевают во флакон с питательной средой: 10–20 %-ный желчный бульон или среда Раппопорта. Эти среды являются элективными.

Для получения возбудителя (подтверждения диагноза) возможно использование мочи, кала, желчи. С этой целью препараты засевают на среду Плоскирева и получают соответственно урино-, копро-, биликультуры. Недостатком бактериологического метода является большая потеря времени, которое необходимо для роста культуры.

Гораздо быстрее подтвердить заболевание, используя серологические методы (диагностические методы, в основе которых лежит реакция взаимодействия антиген-антитело), которые применимы для экспресс-диагностики (результат получают сразу, возможно массовое обследование в случае эпидемической вспышки).

Применяют иммунофлюоресцентные и иммуноферментные методы, в ходе которых выявляют специфический антиген в крови. В качестве серологической диагностики тифопаратифозных заболеваний раньше использовали реакцию агглютинации Видаля. В настоящее время используется более чувствительная реакция непрямой гемагглютинации (РНГА) с эритроцитарными диагностикумами. РНГА применима с 5—7-го дня болезни. Положительной считается реакция, если она произошла в титре не менее 1: 200.

Метод заключается в исследовании парных сывороток, взятых в динамике заболевания. Для постановки диагноза необходимо четырехкратное и более нарастание титра антител к возбудителям брюшного тифа и паратифов.

Методы иммунологической диагностики отличаются своей высокой чувствительностью и дороговизной, что связано со сложностями получения реактивов.

Дизентерия

Дизентерия – инфекционное заболевание, характеризующееся патогенным действием шигеллы, что проявляется нарушением функции дистального отдела толстой кишки и общей интоксикацией организма. Шигеллы, вызывающие дизентерию у человека:

1) дизентерийная шигелла – бактерии Григорьева – Шига, Штуцера – Шмитца, Лардж – Сакса;

2) шигелла Флекснера;

3) шигелла Боди;

4) шигелла Зоне.

Лабораторно-инструментальная диагностика проводится с преимуществом лабораторного компонента, как и при всех инфекциях. В большинстве случаев лабораторные исследования проводятся с целью документального подтверждения диагноза или точного определения возбудителя дизентерии и его свойств, но тем не менее являются обязательными. Это связано с яркой клиникой и характерными симптомами дизентерии, которые не вызывают сомнения в наличии дизентерийной инфекции. Исключением являются атипичные формы и хроническая дизентерия, которые ставят под сомнение диагноз и требуют проведения дифференциального диагноза с обязательным лабораторным обследованием, который может включать в себя следующие методы.

845) Бактериологическое исследование. Только этот метод позволяет выделить культуру возбудителя и изучить все его свойства вплоть до чувствительности штамма к различным антибиотикам. Недостатком является то, что вероятность высева возбудителей не превышает 80 %. Успех во многом зависит от метода посева, времени и кратности забора материала, а также среды посева и др.

846) Иммунодиагностика. Для диагностики дизентерии применяется серологический метод – реакция непрямой гемагглютинации с эритроцитарным диагностикумом (РНГА). Положительные результаты РНГА получают к концу первой недели болезни. В дальнейшем концентрация антител нарастает и снижается только спустя месяц от начала заболевания, что указывает на диапазон времени применения РНГА. Положительным является еще то, что метод высокочувствителен при наличии качественных реактивов. Минимальный диагностический титр, при котором РНГА можно считать положительной, составляет 1: 200. Методы иммуноиндикации (определения антигена возбудителя) могут по праву считаться методами экспресс-диагностики дизентерии – метод флюоресцирующих антител (МФА), РНГА с иммуноглобулиновыми (антительными) диагностикумами, иммуноферментный метод (ИФМ) и др. Они высокочувствительны, применимы при массовых обследованиях и используются в основном при эпидемических вспышках.

847) Общедоступным, технически простым, быстрым является копрологическое исследование (микроскопическое исследование кала – копроцитоскопия). С помощью этого метода не выявляют возбудителя, но получают возможность обнаружить следы его жизнедеятельности в толстом кишечнике, что вкупе с типичной клинической картиной является достаточным для постановки диагноза. При копроцитоскопии кала дизентерийного больного всегда в большом количестве обнаруживаются слизь, лейкоциты с преобладанием нейтрофилов (более 40 в поле зрения), различное количество эритроцитов (но не обязательно) и различное количество измененных эпителиальных клеток. Недостаток в том, что метод не выявляет хроническую дизентерию. Метод, вспомогательный.

4. Ректороманоскопия. Вспомогательный, но ценный метод в связи с тем, что позволяет следить за изменениями патолого анатомической картины. Основным объектом исследования при этом является слизистая оболочка сигмовидной кишки.

При дизентерии различают следующие степени поражения слизистой: катаральный, катарально-геморрагический, эрозивный, язвенный проктосигмоидиты (воспаления слизистой оболочки сигмовидной и начального отдела прямой кишки, которая является непосредственным продолжением сигмовидной). Метод не дает необходимой информации для постановки диагноза, но является бесценным дополнением к бактериологическому или иммунологическому методу. Основным недостатком является то, что метод – инструментально-эндоскопический и заключается в исследовании полости и слизистой оболочки прямой и сигмовидной кишок путем введения в них эндоскопа, что вызывает дискомфорт и даже болезненность у пациента.

5. Аллергологическая проба. Является аналогичным исследованием пробы Манту при туберкулезе. Метод основан на кожно-аллергической реакции на специфический дизентерийный аллерген (название препарата – дизентерин Цуверкалова). Метод вспомогательный, хорош при диагностике хронической дизентерии. В основе этой реакции – способность сенсибилизированного организма, т. е. получившего информацию в виде антигена, реагировать гиперемией и отеком участка кожи на месте инъекции. Иными словами, иммунитет человека, столкнувшийся с возбудителем инфекции, обязательно отреагирует выработкой специфических антител на антигены возбудителя, и даже в случае выздоровления здоровый иммунитет образует «клетки памяти», которые при следующем контакте с инфекцией оперативно реагируют и тем самым создают так называемый приобретенный естественный активный иммунитет. Но иногда из-за малой активности возбудителя болезнь клинически не проявляется, а антитела персистируют по организму и реагируют на первый попавшийся им антиген, которым является введенный внутрикожно дизентерин (туберкулин, бруциллин соответственно при туберкулезе, бруцеллезе), появляются местные реакции воспаления – покраснение, отек. Исследование очень достоверно при правильном его проведении и способно выявить хронические формы инфекции, ни чем не проявляющиеся в периоде ремиссии. Реакцию учитывают по величине отека: при отеке диаметром до 1 см ее считают сомнительной; от 1 до 3 см – слабоположительной; от 3 до 6 см – положительной; более 6 см – резко положительной.

Холера

Холера – острая кишечная инфекция (относится к особо опасным инфекциям), характеризующаяся массивной дегидратацией и потерей солей за счет неукротимых поноса и рвоты вплоть до декомпенсированного гиповолемического шока, который в большинстве случаев необратим. Заражение холерой происходит только фекально-оральным способом и чаще всего – через обсемененные холерным вибрионом водоемы.

Для диагностики холеры используют только лабораторные методы. Важно как можно скорее выявить возбудителя и поставить диагноз с назначением адекватной антибактериальной терапии, так как инфекция имеет высокую склонность к эпидемированию. Но в настоящее время созданные меры профилактики, широкое распространение и доступность антибиотиков практически исключают такую возможность. Выделяют.

1. Для скорейшего определения холерной этиологии гастроэнтерита (предварительный диагноз, объединяющий кишечные инфекции с клиникой диареи, рвоты) применяется экспрессный метод – иммунофлюоресцентный анализ (ИФА). В его основе – свечение комплекса антиген-антитело. Результат получается через 1–2 ч.

2. Ускоренные методы бактериологической диагностики холеры: реакции иммобилизации и микроагглютинации холерных вибрионов с использованием противохолерной сыворотки и фазово-контрастного микроскопа. Результат можно получить через несколько минут. Холерный вибрион не требователен к питательной среде, и культура появляется через 3–4 ч на пептонной воде. Воздействуя на культуру специфической противохолерной сывороткой, можно подтвердить холеру в случае положительного результата (метод макроагглютинации).

3. Классическое исследование – полное поэтапное обследование возбудителя. Проводится, даже если диагноз подтвердился, ускоренными и экспрессными методами. По времени занимает 36 ч. Целью является выделение чистой культуры вибриона и ее идентификация на основании изучения морфологических свойств.

На первом этапе проводят первичную бактериоскопию препаратов из каловых или рвотных жидкостей. Изучая под микроскопом окрашенные по Граму мазки, можно предположить наличие в изучаемой биологической среде холерных вибрионов.

Вторым этапом является посев и выделение культуры. Для этого материал, взятый для исследования, должен быть использован не позднее 3 ч после взятия (рвотные массы, кал).

Для посева используются среды: 1 %-ная пептонная вода (на этом этапе проводится ускоренная диагностика), 1 %-ная таурохолаттеллуритная пептонная вода, среда Мансура, среда Дьедона, агар Хоттингера, холерная среда Оксоида, ТСВ и др. После появления культуры проводят ее идентификацию по морфологическим, биологическим, тинкториальным (окраска возбудителя различными красителями) свойствам.

Целью следующего этапа является определение вида и биовара (внутривидовая классификация возбудителя). Применима реакция развернутой агглютинации с противохолерной сывороткой и типовыми сыворотками Инаба и Огава, а также реакция гемагглютинации куриных эритроцитов, пробы с полимиксином В и др. Положительный результат при классическом исследовании можно получить через 18–24 ч, а отрицательный – через 36 ч.

4. Для выявления антител к антигенам холерного вибриона применяют серологические методы – иммуноферментный анализ, реакцию нейтрализации. Методы для диагностики холеры не применяются, но используются для изучения свойств вибриона.

5. Исследование дуоденального содержимого проводят с целью исключения вибриононосительства, а также для подтверждения полной элиминации возбудителя в периоде реконвалесценции.

Ботулизм

Ботулизм – тяжелая пищевая токсикоинфекция, характеризующаяся действием ботулотоксина, попавшего с пищей, на холинергические структуры нервной системы. Особенно сильной тропностью ботулотоксин обладает по отношению к нервным структурам спинного и продолговатого мозга, что клинически проявляется периферическими парезами, глазными симптомами, нарушениями функции продолговатого мозга вплоть до апноэ и остановки сердца.

Для подтверждения диагноза проводят лабораторную диагностику, целью которой является обнаружение токсина и возбудителя ботулизма в материалах, взятых от больного (кровь, рвотные массы, промывные воды желудка, испражнения), а также в пищевых продуктах, которые пациент употреблял накануне. Кровь необходимо брать до введения антиботулотоксической сыворотки, что является обязательным. Ботулотоксин выявляют в реакции нейтрализации. Возбудителя ботулизма выявляют бактериологическим методом – посев на питательные среды (пепсин-пептон, среда Китта – Тароцци, бульон Хоттингера), получение культуры, изучение свойств, идентификация возбудителя.

Колиинфекция

Колиинфекция – классическая кишечная инфекция, течение которой обусловлено действием некоторых серогрупп кишечной палочки (эшерихий) на стенку желудочно-кишечного тракта. Таким образом, не все разновидности кишечной палочки являются возбудителями колиинфекции. Некоторые из них обитают в нашем кишечнике и являются условно-патогенными по отношению к человеку микробами. Колиинфекция протекает с клинической картиной гастроэнтерита и гастроэнтероколита, что характерно для многих кишечных инфекций и поэтому требует дополнительных методов исследования.

Важнейшая роль в распознавании колиинфекции принадлежит лабораторной диагностике. Для идентификации возбудителя проводят бактериологический метод исследования, при котором не только устанавливают род и вид выделенной чистой культуры, но и определяют принадлежность ее к серогруппе. Внутривидовая идентификация заключается в определении серовара, а также обязательно определение антибиотикограммы (определение групп антибиотиков, к которым чувствительна данная эшерихия). Материалом являются рвотные массы или испражнения больного.

Методы иммунодиагностики не используют из-за разнообразия схожих антигенов у шигелл, эшерихий и многих других бактерий. К тому же в них нет необходимости в связи с тем, что времени для диагностики достаточно, чтобы провести бактериологическое исследование. Колиинфекция не дает эпидемий, течение заболевания – нетяжелое. С целью научного исследования проводят серологические реакции, такие как РНГА, хотя практического значения это не имеет.

Бруцеллез

Бруцеллез – редко диагностируемая, чаще хроническая инфекция, характеризующаяся проникновением возбудителя (Br. melitensis, Br. abortus bovis, Br. abortus suis, Br. neotomae, Br. canis, Br. ovis) в организм человека через слизистые, кожу, а также полисистемным поражением и длительной лихорадкой. Бруцеллез – зоонозная инфекция (источники инфекции – больные животные, чаще – мелкорогатый скот, реже – крупнорогатый скот и свиньи), и заражение происходит чаще всего через мясо, сыр, молоко, брынзу, т. е. алиментарно. Потому бруцеллез относится к кишечным инфекциям, хотя возможны контактный и аэрогенный пути заражения.

Диагностика. Каждый случай заболевания бруцеллезом необходимо лабораторно подтвердить, так как возможна ошибка в клинической диагностике. В качестве лабораторной диагностики применяют бактериологический, серологический и аллергологический методы исследования. Выделяют следующие методы исследования.

1. Выделение культуры и идентификация возбудителя бруцеллеза в материалах, полученных от больных, является абсолютным и самым надежным подтверждением диагноза. Но бактериологическое исследование проводят в специальных лабораториях из-за их сложности и необходимости соблюдения мер предосторожности, а также длительности проведения (рост культуры в случае удачного посева составляет по времени около месяца). В качестве материала для исследования используют специально приготовленные препараты из крови, костного мозга, желчи, мочи, лимфатических узлов, цереброспинальной жидкости, синовиальной жидкости (при артритах), влагалищного отделяемого, пунктата селезенки (желательно использовать биологическую жидкость, взятую из места, наиболее проявляющегося клинически).

В последнее время часто выявляют L-формы бруцелл. L-формы бактерий – их способность к «замедленному» и тем самым менее требовательному образу жизни. Морфологически это выглядит изменением формы и нередко – потерей оболочки. Это дает бактериям возможность выживать в условиях, невозможных для нормальной формы, хотя в период L-формы бактерии теряют способность размножаться и почти всегда непатогенны и не способны к выделению токсинов. Как только такая форма попадает в благоприятные для микроба условия, происходит образование нормальной бактерии, способной к полноценной жизнедеятельности, включая размножение, токсинообразование. Принципы такого механизма лежат в основе хронизации инфекций, которые уже не всегда возможно адекватно санировать. Это связано с недостаточными и неполноценными приемами антибактериальных препаратов, а также со способностью микроорганизмов быстро адаптироваться к неблагоприятным для себя условиям за счет огромного количества бактерий в очаге.